CASA DELLA VENERE IN CONCHIGLIA ( Regio II )
La casa della Venere in conchiglia venne danneggiata da una delle bombe cadute su
Pompei nel 1943, e fu scavata soltanto nel 1952.
Questa è un’altra delle case Pompeiane dove al tempo dell’eruzione non erano ancora
stati riparati del tutto i danni del precedente terremoto e si suppone che l’edificio era
ancora in corso di restauro in quanto ne fa fede la Sala tricliniare con pavimento a
mosaico dove le pareti appaiono appena intonacate in attesa di ricevere la decorazione
pittorica che non poteva mancare.
Tale casa sembra impostata su un'altra precedente, ampliando il peristilio (Giardino
circondato da portici colonnati) ed il triclinio (sala da pranzo, dove si mangiava distesi su
letti disposti su 3 lati) e risistemando tutti gli ambienti.
Gli ambienti principali della casa si sviluppano
essenzialmente lungo le due ali del
giardino.
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Un giardino rigoglioso di piante e di copiosa fauna che ha su due lati un portico a colonne
stuccate e dipinte in giallo oro e bianco, mentre la parete di fondo è decorata con motivi
che richiamano la funzione dell’area circostante: vi è infatti rappresentata una siepe con
cespugli fioriti, bacini marmorei con colombe che si abbeverano sulla destra
Ed una statua di Marte sopra una base sulla sinistra.
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Il quadro centrale invece è di tutt’altro soggetto: una scenografica figurazione pittorica che
rappresenta la nascita di Venere da una conchiglia e che ha reso famosa la casa.
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Qui al centro una finestra dà l'illusione d'aprirsi sul mare, ove in una rosea conchiglia è la
dea Venere, accompagnata da due amorini e quasi sospinta verso Pompei, di cui era
protettrice.
La capigliatura della dea è quella alla moda in età Neroniana e seppur dipinta in modo
maldestro la composizione non manca di effetto soprattutto se vista ad una certa distanza.
Rappresenta quindi un lavoro artisticamente modesto ma di buon effetto coloristico e
decorativo, che mostra con evidenza quale fosse il livello degli artisti locali nell’interpretare
e rielaborare motivi mitologici già sviluppati da altri con maggiore impegno e risultato.
INDAGINI STRUMENTALI
Le indagini strumentali sono state eseguite per un periodo di tempo sufficiente a delineare
il macrosistema (l’intero sito ove sono ubicati gli affreschi da preservare) e le condizioni
microclimatiche presenti, le cui componenti principali comprendono:
-
valutazione dell'esposizione alla temperatura;
-
valutazione dell’umidità relativa;
-
indagini luxmetriche;
-
valutazioni polveri aerodisperse
-
valutazione inquinamento da campi elettromagnetici
-
valutazione inquinamento da inquinanti atmosferici
Per ciascun sito sono state individuate le postazioni di misura relative a differenti affreschi,
ponendo particolare attenzione a quelle caratterizzate da importanti fenomeni di degrado
in corso e collocate in punti tra loro distanti o comunque soggetti a condizioni
microclimatiche differenti (esposizione al sole, alla luce, all’umidità di risalita).
Le misure delle condizioni di temperatura, umidità relativa, l’illuminanza, polveri,
elettromagnetismo ed inquinanti atmosferici sono state condotte con cadenza oraria, per
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un tempo sufficiente a minimizzare l’errore di rilevazione e badando a che l’operatore e il
relativo allestimento non costituisse fattore di imprecisione.
STRUMENTAZIONE DI CAMPIONAMENTO MICROCLIMATICO
I parametri microclimatici rilevati sono stati campionati a mezzo di una STAZIONE
MICROCLIMATICA BABUC prodotta dalla società LSI S.p.A. di Settala (MI).
Tutte le misure sono state eseguite in base ai seguenti principi:
-
la centralina microclimatica è stata posta a circa 1 metro dalla posizione oggetto del
monitoraggio;
-
la scelta dei punti da campionare è stata effettuata privilegiando punti in cui fossero
presenti condizioni macroscopiche di maggiore degrado delle opere d’arte.
I dati campionati sono stati analizzati e valutati a mezzo di apposito software di gestione
dei dati “Infogap evoluto”.
Il campionatore-multiacquisitore è stato dotato delle seguenti sonde:
-
Anemometro a filo caldo BSV101 per la misura del parametro “velocità
dell’aria”
-
Sonda psicrometrica BSU102 costituita da 2 sensori di temperatura, di cui
uno a bulbo asciutto che misura la temperatura secca dell’aria, il secondo è
un termometro rivestito di una guaina idrofila, con l’opposta estremità
immersa in acqua ultrapura, che misura la temperatura di bulbo umido a
ventilazione forzata.
-
Globotermometro BST131; la temperatura rilevata consente di calcolare la
temperatura media radiante.
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-
Sonda per temperatura di bulbo umido a ventilazione naturale BSU121.
L'umidità relativa è data dal rapporto tra l'umidità assoluta (quantità di
vapore d'acqua presente in un ambiente) e l'umidità massima (quantità di
vapore d'acqua che può essere contenuta ad una determinata temperatura
senza che si verifichi la condensazione del vapore).
-
Sonda termometrica BST105;
-
Sonde luxmetriche per ambienti interni BSR001 e BSR003;
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I risultati del campionamento microclimatico e luxmetrico è riportato nei seguenti grafici,
suddivisi per temperatura, umidità e luce presenti nel sito archeologico oggetto delle
indagini strumentali. Per l’indagine riguardante l’influenza della luce sul degrado dei dipinti
si è deciso di posizionare la sonda direttamente su quelli ritenuti maggiormente degradati:
il grafico illuminometrico riporta tre misure relative tre punti riportati con i seguenti codici:
15: affresco lato sx
16: parete centrale
17: parete destra
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Misurazione della temperatura_ casa della Venere in conchiglia
25,00
20,00
°C
15,00
10,00
5,00
0,00
10.00
11.00
12.00
13.00
14.00
15.00
16.00
17.00
18.00
ora
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misurazione dell'umidità_casa della Venere in conchiglia
81,0
79,0
77,0
RH%
75,0
73,0
71,0
69,0
67,0
65,0
10.00
11.00
12.00
13.00
14.00
15.00
16.00
17.00
18.00
ora
Misurazione dell'illuminazione_casa della Venere in conchiglia
2500,0
2000,0
1500,0
lux
15_affresco lato sx
16_parete centrale
17_parete dx
1000,0
500,0
0,0
10.00
11.00
12.00
13.00
14.00
15.00
16.00
17.00
18.00
ora
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CAMPIONAMENTO DEGLI INQUINANTI ATMOSFERICI
Per la ricerca degli inquinanti atmosferici si sono utilizzate sonde appresso elencate. I dati
sono stati anch’essi analizzati e valutati a mezzo di apposito software di gestione dei dati
“Infogap evoluto”.
-
Sonda elettrochimica BSO101 per il monitoraggio della concentrazione
ambientale di carbonio monossido (CO) nel range tra 0 e 1000 ppm;
-
Sonda elettrochimica BSO103 per il monitoraggio della concentrazione
ambientale di anidride carbonica (CO2) nel range tra 0 e 3000 ppm;
-
Sonda elettrochimica BSO108 per il monitoraggio della concentrazione
ambientale di ossidi di azoto (NOx) nel range tra 0 e 20 ppm;
-
Sonda elettrochimica BSO111 per il monitoraggio della concentrazione
ambientale di anidride solforosa (SO2) nel range tra 0 e 20 ppm;
Siti monitorati
Spazio aperto con dipinti
Inquinanti atmosferici ppm
CO2
CO
803
1,7
NO2
0,5
SO2
0,1
CAMPIONAMENTO DEL PARTICOLATO AERODISPERSO
Le polveri aerodisperse sono state campionate mediante uno strumento di prelievo a
portata costante modello DIGIT ISO prodotto dalla Zambelli.
Il flussometro digitale incorporato garantisce assoluta precisione in un range tra 0,5 e 30
litri/minuto e permette di mantenere la portata costante per l’intero campionamento.
Un dispositivo di controllo segnala le anomalie sul display e, se la causa che provoca
l’allarme persiste per un tempo maggiore di 5 minuti, il campionamento viene interrotto.
Lo strumento è dotato di batterie tampone a salvataggio dei programmi impostati in caso
di mancanza di rete.
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Utilizzando tale campionatore unitamente a un elaboratore modello 5005 per la rilevazione
della temperatura e della pressione differenziale è stato possibile effettuare precisi ed
affidabili campionamenti isocinetici.
Le polveri sono state captate su filtri a membrane micropori Metricel da 0,45 µm di colore
bianco in nitrato di cellulosa con diametro di 47 mm.
Dopo il campionamento i filtri sono stati condizionati e quindi ripesati su bilancia analitica
eseguendo una determinazione gravimetrica.
CAMPIONAMENTO ELETTROMAGNETICO
L’attrezzatura utilizzata per monitorare l’inquinamento indotto da campi elettrici o
magnetici è costituito da un monitore PMM Mod. 8053 A corredato da un sensore
isotropico di campo elettrico EP-330 operante tra 100 KHz-3 GHz.
La strumentazione di misura è stata controllata a cura del laboratorio di controllo SIT 08,
tracciabile all’Istituto Metrologico Nazionale.
L’uso di procedure automatiche minimizza i tempi di calibrazione della strumentazione. Lo
strumento è dotato di un microprocessore e di un display grafico di grandi dimensioni.
Utilizza circuiti ad alta densità che sono facilmente riparabili o sostituibili.
Il firmware interno può essere aggiornato via PC o scaricato dal sito.
Polveri totali
Campi elettromagnetici
Siti monitorati
Valore trovato mg/mc
Siti monitorati
Spazio aperto con dipinti
0,5
Spazio aperto con dipinti
Valore trovato
V/m
< 0,3
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INDAGINI MICROBIOLOGICHE
La microflora presente sulle costruzioni di materiale lapideo è rappresentata da un
complesso ecosistema che si sviluppa in diversi modi a secondo delle condizioni
ambientali e delle caratteristiche chimiche e fisiche del materiale. Per la caratterizzazione
dei biodeteriorigeni presenti nel sito in esame si è proceduto ricercando i seguenti gruppi
microbici e fisiologici:
• Conta Microbica Totale aerobia;
•
Funghi;
•
Lieviti;
•
Attinomiceti;
•
Batteri solfo-ossidanti;
•
Batteri nitrosanti;
•
Batteri nitricanti;
•
Batteri azotofissatori;
•
Microflora fototrofa.
Sono stati effettuati dei prelievi non distruttivi delle superfici delle opere d’arte. La scelta
dei punti da campionare è stata fatta valutando il grado di deterioramento complessivo
dell’intero sito, individuando, attraverso una preliminare valutazione visiva, la presenza di
eventuali patine microbiche o biofilm, o di zone con macchie di umidità, suscettibili di
contaminazioni microbiche. In assenza di evidenti sintomi di deterioramento si procedeva
utilizzando una termocamera ad infrarossi che permetteva di rilevare i punti di maggiore
umidità non visibili ad occhio nudo. Tale analisi preliminare ha permesso di individuare in
questo sito tre pareti da campionare (parete centrale, sinistra e destra) in prossimità di
punti maggiormente danneggiati (patine verde-nera) e umidi.
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CAMPIONAMENTO DELLA MICROFLORA BIODETERIORIGENA
Per il campionamento e il monitoraggio sono state consultate e seguite le
Raccomandazioni NORMAL (3/80; 19/85; 1/80; 9/82) e la normativa UNI ( NI 10922 e
10923) applicando delle modifiche metodologiche a seconda delle esigenze e delle
condizioni ambientali via via riscontrate. Le modalità di campionamento utilizzate sono
state:
• Tamponi
•
Aria
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Per il prelievo con il tampone è stato utilizzato un delimitatore di superficie costituito da
una sagoma vuota al centro di 100 cm2 di ampiezza, costituito da materiale plastico
monouso o da metallo sterilizzabile. Una volta scelta e delimitata la superficie da
campionare, il prelievo è stato effettuato mediante l’uso di tamponi sterili che sono stati,
poi, immersi in 18 ml di soluzione fisiologica.
Per il monitoraggio dell’aria piastre di PCA e di DRBC sono state inserite nel campionatore
MASS 100 (Foss Electrics) e, alla fine del periodo di aspirazione, esse sono state incubate
a 28°C per 24-48 h per il conteggio della Microflora totale aerobia, lieviti e muffe. Il valore
ottenuto è stato espresso come Indice di Contaminazione Microbica dell’aria (IMA)
calcolato come UFC/50 m3 di aria.
DETERMINAZIONI MICROBIOLOGICHE
Conteggio microbico
La contaminazione delle superfici è stata valutata inoculando i substrati di crescita solidi
indirettamente mediante diluizioni-sospensioni delle stesse in soluzione fisiologica. Per la
ricerca e il conteggio della carica microbica totale, di funghi, lieviti e attinomiceti sono stati
utilizzati substrati solidi (PCA, DRBC, Terreno per attinomiceti secondo Jensen) incubati a
28°C per 48-72h; invece per la microflora fototrofa sono stati utilizzati diversi substrati
solidi e liquidi specifici che hanno permesso di contare diversi gruppi di alghe (Diatomee,
Cianoficee, Cloroficee e la Carica Algale Totale). Per la valutazione di quest’ultima è stato
usato un terreno di coltura secondo Pochon e Tardieux, e un nuovo substrato
appositamente messo a punto in base allo studio dei diversi componenti utili per la
crescita di tutte le specie di alghe. Le piastre sono state incubate a temperatura ambiente
per 30 giorni in presenza di luce continua naturale di giorno e artificiale di notte, ottenuta
con lampade al neon con intensità di 3600 lux.
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La presenza di gruppi fisiologici appartenenti ai solfo-ossidanti, nitrosanti, nitricanti e
azotofissatori è stata ricercata in mezzo liquido dopo circa 20 giorni d’incubazione a 28°C,
attraverso la determinazione dei prodotti delle loro specifiche attività fisiologiche oppure
valutando la formazione di un anello superficiale del mezzo liquido causato
dall’accrescimento microbico, come nel caso degli azotofissatori.
Come mostrato in tabella, sugli affreschi di questa sede, la contaminazione microbica
totale è molto bassa su tutte le pareti campionate (valori compresi tra 0,12 e 0,58
UFC/cm2). La contaminazione di funghi e lieviti è del tutto assente, tranne sulla parete
sinistra dove è, comunque, bassissima (valore pari a 0,11 UFC/cm2). Gli attinomiceti sono
assenti in tutti i punti campionati. Non è stata, poi, rilevata la presenza di altri gruppi
fisiologici. Per quanto riguarda la contaminazione di alghe e cianobatteri sono ancora in
corso analisi per ottenere un’identificazione molecolare delle specie eventualmente
presenti.
Campioni
Solfo-ossidanti
(MPN/cm2)
Nitrosanti
(MPN/cm2)
15
16
-
-
-
-
Carica
batterica
totale
(UFC/cm2)
0
0,58
-
-
-
-
-
17
18
Nitricantia
(MPN/cm2)
Azotofissatori
(MPN/cm2)
-
-
Funghi
(UFC/cm2)
Attinomiceti
(UFC/cm2)
0,11
0
0,06
0
0,12
0
0
0,35
0
0
15
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0,6
Carica batterica totale
Funghi e lieviti
Attinomiceti
0,5
0,3
2
UFC/cm
0,4
0,2
0,1
0
Parete sx
Parete centrale
(conchiglia)
Parete centrale (viso)
Parete dx
Punti campiona
Conteggi microbici per la valutazione della contaminazione dell’aria
I risultati ottenuti dal monitoraggio dell’aria hanno evidenziato una contaminazione
mediamente alta per quanto riguarda la contaminazione microbica totale (valori dell’indice
IMA compresi tra 16 e 19 UFC/ 50 m3) e alta per quella di funghi e lieviti (indice IMA
compreso tra 32,6 e 45,8 UFC/ 50 m3) sia sulla parete sinistra che sulla parete centrale.
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Carica microbica totale (PCA)
UFC/ 50m3
Funghi e lieviti (DRBC)
UFC/ 50m3
Parete centrale
16
45,8
Parete sinistra
19
32,6
Punti campionati
70
Carica batterica totale
Funghi e lieviti
60
50
40
30
20
10
Casa della
Venere in
Conchiglia
Casa del Menandro
Casa di Iulius Polybius
Parete sx
Viso della
Musa
Parete
destra
Parete
centrale
Parete dx
(affresco
angelo)
Parete dx
(affresco
uomo)
Ingresso
porta finta
Parete sx
Stanza
con
mosaico
Volto
Menandro
Parete sx
Parete
centrale
Parete
centrale
Parete sx
0
Casa degli Amorini Dorati
Punti campionati
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Identificazione fenotipica
Gli isolati microbici ottenuti dall’isolamento su substrato solido, sono stati sottoposti a
identificazione microbica convenzionale e molecolare.
Preliminarmente è stata effettuata un’osservazione delle colonie andando a rilevare la loro
morfologia in piastra prima di procedere alla purificazione. Si è valutata la dimensione, la
forma, i margini, il colore e la consistenza.
Una volta ottenute delle colonie pure, queste sono state osservate al microscopio La
morfologia degli isolati è stata evidenziata mediante osservazione al microscopio ottico di
preparati a fresco e colorati. Questo tipo di indagine ha consentito di riconoscere la
morfologia e la struttura cellulare propria di ogni isolato microbico.
E’ stato usato il microscopio in campo chiaro di preparati a fresco o colorati. La
colorazione usata per l’osservazione di alcuni campione è quella semplice. L’osservazione
al microscopio ha permesso di individuare e riconoscere, preliminarmente, i principali
gruppi microbici oggetto delle analisi. L’osservazione al microscopio è stata fatta non solo
per le colonie purificate ma anche per i substrati liquidi che hanno mostrato crescita.
Ove possibile, le colonie sono state sottoposte alla reazione di Gram e al saggio della
catalasi.
Identificazione molecolare
In seguito alla purificazione e all’identificazione, i ceppi isolati sono stati sottoposti a
estrazione del DNA, per procedere all’accertamento tassonomico mediante
sequenziamento di una regione parziale del 16S DNA, con amplificazione del 16S
eubatterico mediante PCR, per ottenere la loro identificazione definitiva. L’amplificazione è
stata eseguita in un termociclizzatore programmabile. Tutto il prodotto di reazione
ottenuto mediante PCR, è stato controllato mediante elettroforesi su gel di agarosio
all’1,5% a 100 volt per circa 1h. Per procedere alla purificazione le bande di DNA ottenute
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sul gel erano asportate mediante taglio con bisturi, e sottoposte a un processo di
purificazione, quantificazione e infine sequenziamento. Invece, in seguito alla purificazione
e all’identificazione, i ceppi fungini isolati sono stati sottoposti a estrazione del DNA, per
procedere all’accertamento tassonomico mediante sequenziamento di una regione
parziale D1-D2 del 23S rDNA mediante PCR. Tutto il prodotto di reazione ottenuto
mediante PCR, è stato controllato mediante elettroforesi su gel di agarosio all’1,6% a 100
volt per circa 1h. Per procedere alla purificazione le bande di DNA ottenute sul gel erano
asportate mediante taglio con bisturi, e sottoposte a un processo di purificazione,
quantificazione e infine sequenziamento.
Dagli affreschi presenti sulla parete centrale, in prossimità dell’affresco raffigurante la
conchiglia sulla quale si posa Venere, sono state isolate forme cocciche appartenenti alla
specie Staphylococcus epidermidis. Invece sulla parete destra, sono state isolate forme
batteriche appartenenti al genere Microbacterium sp.. In questa casa, la contaminazione
dei funghi registrata a livello quantitativo è stata molto bassa e quindi al momento
dell’isolamento non si sono ottenuti dei risultati significativi.
Identificazione fungina mediante metodi molecolari
Batteri*
Funghi
Staphylococcus epidermidis
N.I.
Microbacterium sp.
*Identificazione mediante sequenziamento del 16S rDNA.
‫٭‬Identificazione mediante sequenziamento del frammento D1-D2 del 28S rDNA.
N.I. Non isolati
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