Card per test monofase Helicobacter Pylori Ag (Feci) Metodica C-45 Italiano Test rapido monofase per la determinazione immunocromatografica dell’antigene batterico Helicobacter pylori nelle feci.. Solo per uso diagnostico professionale in vitro. SOMMARIO H. Pylori Card è un test immunocromatografico di screening per la rilevazione dell’antigene batterico di Helicobacter pylori nelle feci. Helicobacter pylori (noto anche come Campylobacter pylori) è un batterio con morfologia a spirale, flagellato, Gram negativo, che infetta la mucosa gastrica e causa varie malattie gastrointestinali, coma la dispepsia non ulcerosa, ulcere duodenali e gastriche, gastriti attive e può aumentare il rischio di adenocarcinoma allo stomaco, tanto da essere classificato come agente carcinogeno di tipo I. PRINCIPIO H. Pylori Card è un metodo immunocromatografico assolutamente non invasivo, semplice da eseguire, rapido e molto preciso nel risultato. Il metodo prevede l’utilizzo di un anticorpo monoclonale fissato ad una membrana cromatografica specifico per l’antigene di H. pylori e di un secondo anticorpo coniugato con particelle di oro colloidale marcato a un colorante. Se è presente nel campione di feci l’antigene di H. Pylori, si forma un complesso con l’anticorpo marcato con il colorante. Quando il liquido passa attraverso la membrana il complesso sarà catturato dall’anticorpo fissato sulla • Durante l’analisi dei campioni indossare abbigliamento protettivo: camice da laboratorio, guanti monouso e protezione per gli occhi. • Umidità e temperatura possono influire negativamente sui risultati. • Tutti i reattivi ed i materiali venuti a contatto con campioni potenzialmente infetti devono essere disinfettati o autoclavati a 121°C per almeno 1 ora. CONSERVAZIONE E STABILITÀ Conservare nel sacchetto sigillato a temperatura ambiente o in frigorifero (2-8°C) oppure a temperatura ambiente fino a 30 °C . La card è stabile sino alla data di scadenza indicata sul sacchetto sigillato. Conservare la card nel sacchetto sigillato sino al momento dell’utilizzo. NON CONGELARE. Non utilizzare dopo la data di scadenza. PRELIEVO E PREPARAZIONE DEI CAMPIONI 5. Leggere i risultati del test in 10 minuti. E 'importante che, prima che il risultato sia letto, lo sfondo sia chiaro.Leggere i risultati dopo 10 minuti. Non leggere il risultato dopo 10 minuti. Per evitare confusione, gettare il dispositivo dopo l'interpretazione del risultato. Raccogliere il campione di feci Posizionare l’applicatore nel tampone e mescolare bene rompere qui lasciare riposare 2 minuti INTERPRETAZIONE DEI RISULTATI Raccogliere una sufficiente quantità di feci (1-2 ml o 1-2 g), in un contenitore di raccolta campione. I migliori risultati si ottengono se il test viene eseguito entro 6 ore dalla raccolta. Il campione raccolto può essere conservato per 3 giorni a 2-8 C° se non analizzato entro 6 ore. Per la conservazione a lungo termine, i campioni devono essere tenuti sotto -20 C°. Per elaborare campioni fecali: Per i campioni solidi: Svitare il tappo del tubo di raccolta del campione, poi casualmente infilzare del campione fecale in almeno 3 punti diversi per raccogliere circa 50 mg di feci (pari a 1/4 di un pisello). Per i campioni liquidi: Tenere il contagocce verticalmente, aspirare campioni fecali, e quindi trasferire 2 gocce (circa 80 μl) nella provetta di raccolta del campione contenente il tampone di diluizione. Avvitare e serrare il tappo sul tubo di raccolta del campione, quindi agitare la provetta di raccolta del campione energicamente per mescolare il campione e il tampone di diluizione. Lasciare il tubo a riposo per 2 minuti. Risultato positivo del test Appaiono due bande nella finestra del risultato. In aggiunta alla banda nella zona di controllo C appare una banda nella zona del test T. L’intensità delle bande potrebbe variare. Il risultato mostra che è presente nel campione di feci l’antigene di H. pylori . COMPOSIZIONE DELLA CONFEZIONE Risultato del test non valido Se non appare la banda nella regione di controllo C il test è da considerarsi non valido. L’assenza della banda di controllo C indica che la procedura di dosaggio è stata eseguita in maniera non corretta, oppure che i reagenti di dosaggio hanno subito un deterioramento. Ripetere il dosaggio con una nuova card facendo attenzione alla metodica. Risultato negativo del test Appare una singola banda nella finestra del risultato. Non è visibile una banda nella regione del test T. Il risultato mostra che non è presente nel campione di feci l’antigene di H. pylori . membrana. La comparsa di una banda colorata nella zona T, indica che il risultato del test è positivo. Inoltre il test prevede una procedura di controllo Materiale Fornito interna rappresentata dalla comparsa di una banda nella zona di controllo C che • Card • Metodica si forma indipendentemente dalla presenza dell’antigene di H. Pylori. La Materiale Necessario Ma Non Fornito formazione della banda nella zona di controllo C indica che il dosaggio è avvenuto in maniera corretta. PRECAUZIONI • Solo per uso diagnostico professionale in vitro. Non utilizzare dopo la data di scadenza. • Non mangiare, bere o fumare nell’area in cui vengono manipolati i campioni o i kit. • Non utilizzare il test se il sacchetto è danneggiato. • Manipolare tutti i campioni come potenzialmente infettivi. Osservare le adeguate precauzioni contro i rischi microbiologici in tutte le fasi d’analisi e seguire le procedure standard per il corretto smaltimento dei campioni. • Carta assorbente per prevenire schizzi di soluzione • Contenitori per la raccolta dei campioni di feci • Timer PROCEDURA 1.Rimuovere la card dalla busta di alluminio tirando lungo la tacca e utilizzarla il prima possibile. 2. Raccolta dei campioni. Vedi anche la raccolta dei campioni. 3. Tenendo il dispositivo di raccolta del campione in posizione verticale, rompere con attenzione la punta del dispositivo di raccolta. 4. Dispensare 2 gocce (~ 80μL) della soluzione campione nel pozzetto del campione della card, come in figura. LIMITAZIONI VALORI ATTESI 1) La card per il test monofase dell’antigene di H. pylori nelle feci è un test rapido immunocromatografico per un uso professionale in vitro e deve essere utilizzato solo per una rilevazione qualitativa dell’antigene di H. pylori. 2) La card per il test monofase dell’antigene di H. pylori nelle feci non deve essere usata come unico criterio di diagnosi dell’infezione da H. pylori . 3) Come per tutti i test diagnostici, i risultati devono essere interpretati alla luce del quadro clinico complessivo del paziente. 4) Se il test risulta negativo e i sintomi clinici persistono, si raccomanda di eseguire altri test clinici. Un risultato negativo non esclude comunque la possibilità di infezione da H. pylori . 5) Gli antibiotici, gli inibitori della pompa protonica e i preparati a base di bismuto, inibiscono H. pylori. Risultati falsamente negativi si hanno durante e subito dopo la terapia, in questo caso si consiglia di ripetere il dosaggio dopo due settimane dalla terapia. Helicobacter pylori infetta più della metà delle persone nel mondo5. La prevalenza dell'infezione varia tra i paesi e tra gruppi diversi all'interno della stessa nazione6. Il tasso di prevalenza negli Stato Uniti suggerisce un incidenza di infezione del 2%. La prevalenza una tantum di ulcera peptica è di circa il 12% negli uomini e del 9% nelle donne7. Gli studi hanno trovato che oltre il 90% dei pazienti con ulcera duodenale e il 80% dei pazienti con ulcera gastrica sono infettati con H. pylori8,9 La card H. pylori rileva la presenza di antigeni di H. pylori in campioni di feci. I valori attesi per ogni data popolazione deve essere determinata per ogni laboratorio. Il tasso di positività da parte dei laboratori può variare a seconda della posizione geografica, gruppo etnico e ambiente di vita. PERFORMANCE E’ stato condotto uno studio con campioni di feci di 165 pazienti tra cui entrambi con disturbi gastrointestinali sintomatici e di campioni di pazienti non sintomatici e 100 campioni di feci normali. Confronto per tutti i soggetti con la card per il test monofase dell’antigene di H. pylori e i kit ELISA di riferimento hanno dato i seguenti risultati mostrati seguente tabella: Metodo H.P. card Risultati Positivo Negativo Risultati totali EIA Positivo 163 2 165 Negativo 0 100 100 Risultati totali 163 102 265 Sensibilità: 98.8%, Specifcità: 100%, Accuratezza:98.9% Riproducibilità La riproducibilità del test H. pylori Ag è stata determinata utilizzando, campioni positivi deboli, positivi forti e negativi con controlli negativi e positivi. Questi campioni sono stati testati in duplicati di 8 in uno studio da parte di cinque operatori che lavorano in modo indipendente nello stesso laboratorio. L'accordo del risultato atteso è stata del 100%. Specificità I seguenti ceppi batterici e virali sono stati usati per testare la specificità del test H. pylori Ag. Feci positive e negative sono state diluite con > 1x108 organismo / ml e testati dalla card H. pylori Ag. Campioni di feci, positive a H. pylori, rimangono positive dopo l’aggiunta dei microorganismi, quelle negative rimangono negative. BIBLIOGRAFIA 1. Graham, David Y. (Editor), (2007) Journal compilation© 2007 Blackwell Publishing Ltd., Helicobacter 12 (Suppl.1): 1-56. 2. Kist, M.; Glocker, E.; Suerbaum S. (2005): Pathogenese, Diagnostik und Therapie der Helicobacter pylori-Infektion, Bundesgesundheitsbl – Gesundheitsforsch – Gesundheitssschutz 2005, 48: 669-678, Springer Verlag 2005. 3. Meurer, Linda N.; Meurer, M.D., M.P.H., Bower, Douglas J.,M.D. (2002): Management of Helicobacter pylori infection, American Family Physician Vol.65, No.7, 1. April 2002. 4. Weiss, Judith; Mecca, James; da Silva, Elvira; Gassner, Dieter (1994): Comparison of PCR and other Diagnostic Techniques for Detection of Helicobacter Pylori Infection in Dyspeptic Patients, Journal of Clinical Microbiology Vol.32, No.7, p.1663-1668, (1994). 5. Marshall BJ. JAMA. 1995;274:1064-1066 6. Breuer T, Malaty HM, Graham DY. The epidermiology of H. pylori-associated gastroduodenal diseases. In: Ernst PB, Michetti P, Smith PD, eds. The Immunobiology of H. pylori: From Pathogenesis to Prevention. Philadephia. Lippincott-Raven, 1997:1-14. 7. Graham DY, Malaty HM, Evans DG, Evans, Jr. DJ, Klein PD, and Adam E. Epidermiology of Helicobacter pylori in a asymptomatic population in the United States. Effect of age, race, and socioeconomic status. Gastroenterology, 1991;100:1495-1501. 8. Anand BS, Raed AK, Malaty HM, et al. Low point prevalence of peptic ulcer in normal individual with Helicobacter pylori infection. Am J Gastroenterol. 1996,91:1112-1115. 9. Tytgat GNJ, Noach LA, Rauws EAJ. Helicobacter pylori infection and duodenal ulcer disease. Gastroenterol Clin North Am. 1993;22:27-139. Indice dei simboli Attenzione, consultare le N°determinazioni istruzioni per l’uso per kit Fabbricante Solo per uso Usare entro Conservare a 2-30°C Microorganismi e virus testati: Adenovirus type II Campylobacter jejuni Clostridium difficile Enterobacter cloacae Escherichia hermanii Klebsiella pneumonia Nocardia asteroids Pseudomonas fluorescens Salmonella (Group B) Salmonella typhimurium Shigella dysenteriae Staphylococcus aureus Staphylococcus galactiae Campylobacter coli Campylobacter fetus Campylobacter lari Candida albicans Clostridium perfringens Enterococcus feacalis Escherichia coli Escherichia fergusonii Helicobacter cinaedi Helicobacter mustelae Mycobacterium smegmatis Prvidencia stuartii Proteus vulgaris Pseudom. aeruginosa Rotavirus Citrobacter freundii Salmonella Dublin Salm. Hilversum (Group N) Salmonella Minnesota Shigella boydii Shigella flexneri Shigella sonnei Serratia liquefaciens S. aureus (Cowan) Staphylococcus faecalis Staphylococcus epidermidis Yersinia enterocolitica Non riutilizzare diagnostico in vitro Fabbricante INTERMEDICAL s.r.l. Via A.Genovesi,13 80010 Villaricca(Na)-ITALY Numero di lotto REF Codice #