QUANTA Flash® DGP IgG
Reagents
701173
Per uso diagnostico In Vitro
Uso previsto
Il QUANTA Flash DGP IgG è un test immunologico della chemiluminescenza (CIA) per la
determinazione semiquantitativa di anticorpi IgG anti-peptidi di gliadina deamidati (DGP) nel siero
umano. La presenza di anticorpi IgG anti-DGP, unitamente ai risultati clinici e ad altri test di
laboratorio, può essere usata per agevolare la diagnosi della celiachia con o senza deficit di IgA,
nonché della dermatite erpetiforme.
Introduzione e descrizione del test
La malattia celiaca è un'enteropatia sensibile al glutine i cui tratti principali includono infiammazione
e caratteristico appiattimento istologico della mucosa intestinale con conseguente sindrome da
malassorbimento. L’eziologia esatta della malattia resta sconosciuta ma la gliadina, ovvero la
frazione solubile in alcol del glutine di grano, è chiaramente l’agente tossico.1,2
Originariamente, per diagnosticare la celiachia e le patologie correlate venivano eseguite una serie
di biopsie intestinali multiple. Recentemente, la European Society of Pediatric Gastroenterology and
Nutrition (ESPGAN)3 e numerose altre pubblicazioni4-6 hanno raccomandato l’uso di marcatori
sierologici, come gli anticorpi anti-gliadina, anti-DGP e anti-endomisiali, per ridurre il numero di
biopsie intestinali necessarie per formulare una diagnosi.
Recenti studi hanno rilevato che gli anticorpi di pazienti celiaci si legano a un numero molto limitato
di epitopi specifici sulla molecola di gliadina selettivamente deamidata.7-9 Si ritiene che la
deamidazione sia causata dall'enzima celiaco associato, la transglutaminasi tissutale.10 Sulla base di
queste osservazioni, sono stati sviluppati test in cui vengono utilizzati peptidi della gliadina deamidati
e definiti. Essi presentano un’accuratezza diagnostica superiore per la celiachia rispetto ai test
antigliadina standard.5,11-14
Una strategia di screening sensibile per l'individuazione di soggetti affetti dalla malattia celiaca in
popolazioni a rischio include test per gli anticorpi IgG e IgA diretti verso peptidi della gliadina
deamidati, in quanto una proporzione significativa di pazienti affetti da celiachia presenta un deficit di
IgA.12 Numerosi studi hanno dimostrato l'elevata utilità clinica di questa strategia di analisi.15,11-14
La dermatite erpetiforme è una malattia della pelle cronica con formazione di vescicole. La maggior
parte dei pazienti con dermatite erpetiforme presenta sensibilità al glutine e atrofia del digiuno
identica a quella riscontrata nella celiachia e una dieta rigida priva di glutine determina un
miglioramento delle lesioni sia intestinali sia cutanee.16,17 Uno studio ha rivelato che gli anticorpi antiDGP sono più comuni rispetto agli anticorpi anti-tTG nei pazienti con dermatite erpetiforme.18
Il test QUANTA Flash DGP IgG è un test con prestazioni migliori per la determinazione degli
anticorpi IgG diretti verso un peptide sintetico selettivamente deamidato derivato dalla gliadina del
glutine del grano e come tale consente la determinazione della celiachia persino con coesistente
deficit di IgA.
Principi della procedura
Il peptide di gliadina sintetico deamidato è rivestito su sfere paramagnetiche, conservate nella
cartuccia di reagente in condizioni tali da conservare l’antigene nel suo stato reattivo. Quando la
cartuccia per il test è pronta per essere utilizzata per la prima volta, questa viene interamente
capovolta numerose volte per miscelare i reagenti in modo accurato. La cartuccia di reagente viene
quindi caricata sullo strumento BIO-FLASH®.
Un campione di siero del paziente viene diluito 1:17 dallo strumento utilizzando il risciacquo del
sistema aggiunto a una cuvetta in plastica monouso. Piccole quantità di siero del paziente diluito, le
sfere di DGP e il tampone del test vengono tutti combinati in una seconda cuvetta e miscelati.
Questa cuvetta viene incubata a 37 °C. Le sfere vengono quindi magnetizzate e lavate più volte. Il
1
coniugato anticorpo-isoluminolo viene aggiunto alla cuvetta e incubato a 37 °C. Ancora una volta le
sfere vengono magnetizzate e lavate ripetutamente. Il coniugato con isoluminolo produce una
reazione luminescente quando alla cuvetta vengono aggiunti reagenti (“trigger”). La luce prodotta da
questa reazione viene misurata in RLU (unità di luce relativa) dal sistema ottico BIO-FLASH. Le RLU
sono proporzionali alla quantità di coniugato di isoluminolo legato che a sua volta è proporzionale
alla quantità di anticorpi anti-DGP legati all’antigene DGP sulle sfere.
Il test QUANTA Flash DGP IgG utilizza una curva master predefinita specifica per il lotto che viene
caricata sullo strumento utilizzando il codice a barre della cartuccia di reagente. In base ai risultati
ottenuti con due calibratori, viene creata una Curva di lavoro specifica dello strumento, che viene
usata dal software per calcolare le unità di chemiluminescenza (CU) a partire dal valore RLU
ottenuto per ciascun campione.
Reagenti
1.
La cartuccia di reagente QUANTA Flash DGP IgG contiene i seguenti reagenti per 50 test:
a.
Sfere paramagnetiche rivestite con DGP in tampone, contenenti stabilizzanti proteici
e conservanti.
b.
tampone per il dosaggio – di colore rosa, contenente soluzione fisiologica tamponata
con Tris, Tween 20, stabilizzanti proteici e conservanti.
c.
Tracciante IgG – Anticorpi anti-IgG umani marcato con isoluminolo in tampone,
contenenti stabilizzanti proteici e conservanti.
Avvertenze
1.
Questo tampone per test contiene una sostanza chimica (cloramfenicolo 0,02%) ritenuta
cancerogena dallo Stato della California.
2.
Come conservante viene usato l’azoturo di sodio. L’azoturo di sodio è un veleno e può
essere tossico se ingerito o assorbito attraverso la pelle o gli occhi. L’azoturo di sodio può
reagire con le tubature in piombo o rame e formare azidi metalliche potenzialmente
esplosive. Lavare i lavandini, se usati per lo smaltimento dei reagenti, con grandi volumi di
acqua per evitare l’accumulo di azide.
3.
Utilizzare attrezzatura di protezione idonea quando si manipolano i reagenti forniti.
4.
I reagenti rovesciati devono essere puliti immediatamente. Durante lo smaltimento delle
scorie, rispettare tutti i regolamenti ambientali federali, statali e locali.
Precauzioni
1.
Questo prodotto è destinato a un uso diagnostico In Vitro.
2.
Il test è concepito per essere utilizzato esclusivamente con lo strumento BIO-FLASH.
3.
Una volta aperta, la cartuccia di reagente deve essere conservata nel dispositivo di
caricamento girevole per i reagenti dello strumento. Occorre prestare attenzione ed evitare la
fuoriuscita di reagenti quando la cartuccia viene posta per la prima volta nello strumento.
4.
La contaminazione chimica dei reagenti può derivare da una pulizia o un risciacquo
inadeguati dello strumento. I residui di comuni sostanze di laboratorio come la formalina, la
candeggina, l’etanolo o di detergente possono causare interferenze nel test. Assicurarsi di
seguire la procedura di pulizia dello strumento raccomandata come specificato nel manuale
operatore di BIO-FLASH.
2
Condizioni di conservazione
1.
Conservare le cartucce di reagente sigillate a una temperatura compresa tra 2 e 8 °C. Non
congelare. I reagenti sono stabili fino alla data di scadenza se conservati e maneggiati in
accordo alle istruzioni.
2.
Le cartucce di reagenti sigillate devono essere conservate nello strumento. Il software BIOFLASH controlla la scadenza delle cartucce montate (in uso) nonché la scadenza del lotto di
reagente (durata) della cartuccia di reagente. Il sistema non consente di utilizzare una
cartuccia scaduta.
Raccolta, preparazione e trattamento dei campioni
Questa procedura deve essere eseguita con un campione di siero. I campioni microbicamente
contaminati, sottoposti a trattamento termico o i campioni contenenti particolato visibile non devono
essere usati. Evitare sieri itterici o fortemente emolizzati. Dopo il prelievo, separare il siero dal
coagulo. Il CLSI Document H18-A4 raccomanda le seguenti condizioni di conservazione per i
campioni:
1.
Conservare i campioni a temperatura ambiente per un massimo di 8 ore.
2.
Se il dosaggio non verrà completato entro 8 ore, refrigerare il campione a 2-8 °C.
3.
Se il dosaggio non verrà completato entro 48 ore, oppure per la spedizione del campione,
congelare a -20 °C o a una temperatura inferiore. I campioni congelati devono essere
miscelati dopo il decongelamento e prima di eseguire il test.
Procedura
Materiale fornito
1
Cartuccia del reagente QUANTA Flash DGP IgG
Materiale aggiuntivo richiesto ma non fornito
Strumento BIO-FLASH con computer operativo
Soluzione di risciacquo del sistema BIO-FLASH (Codice: 3000-8205)
Trigger BIO-FLASH (Codice: 3000-8204)
Cuvette BIO-FLASH (Codice: 3000-8206)
Calibratori QUANTA Flash DGP IgG (Codice: 701171)
Controlli QUANTA Flash DGP IgG (Codice: 701172)
3
Uso dell’analizzatore chemiluminescente BIO-FLASH
1.
Per istruzioni dettagliate sull'analizzatore chemiluminescente BIO-FLASH e il software BIOFLASH, vedere il manuale dell'operatore fornito insieme al sistema BIO-FLASH. Per
maggiori informazioni e per la risoluzione dei problemi riguardanti il test, contattare il servizio
tecnico di INOVA Diagnostics, Inc. all’indirizzo o al numero di telefono riportati alla fine del
presente inserto.
2.
Per svuotare il contenitore delle scorie solide, aprirlo. Rimuovere il contenitore di scorie
solide e smaltire correttamente le cuvette usate. Sostituire il contenitore delle scorie solide,
chiuderlo e fare clic su Yes nella finestra Empty Waste Drawer.
3.
Per sostituire i trigger, fare clic sul pulsante Bulks Inventory F9 (in alto a destra).
a. Nella schermata Inventory – Bulks , fare clic sul pulsante Triggers a sinistra. Viene
visualizzata una nuova finestra intitolata Add Triggers – Remove old bottles.
b. Aprire e rimuovere il cassetto delle scorie sullo strumento BIO-FLASH. Eliminare tutte le
cuvette presenti nel cassette delle scorie. Fare clic su Yes nella finestra Empty Waste
Drawer. Rimuovere i flaconi di trigger dai relativi supporti e fare clic sul pulsante Next.
Svitare i flaconi di trigger vecchi dai relativi tappi e sostituirli con trigger nuovi. Procedere
sostituendo un flacone per volta e abbinandoli ai colori dei tappi (bianco con bianco e
rosso con rosso).
c. Seguire le istruzioni presentate nella nuova finestra Add Triggers – Add Trigger 2
bottle. Una volta che il codice a barre è stato accettato, inserire il Trigger 2 nel supporto
bianco. Fare clic su Next.
d. Seguire le istruzioni presentate nella finestra Add Triggers – Add Trigger 1 bottle. Una
volta che il codice a barre è stato accettato, inserire il Trigger 1 nel supporto rosso. Fare
clic su Finish. Sostituire e chiudere il cassetto delle scorie.
4.
Per sostituire il contenitore con la soluzione di risciacquo del sistema, fare clic sul pulsante
Bulks Inventory F9 (angolo superiore destro). Nella schermata Inventory – Bulks, fare clic
sul pulsante Sys. Rinse. Nella nuova finestra Add System Rinse – Remove bottles, fare
clic su Next. Seguire le istruzioni presentate nella nuova finestra Add System Rinse – Add
bottle. Una volta che il codice a barre è stato accettato, se necessario, fare clic su Finish.
5.
Per svuotare il contenitore delle scorie liquide, dalla schermata Inventory – Bulks , fare clic
sul pulsante Fluid Waste . Rimuovere e smaltire le scorie liquide. Fare clic su Next. Dopo
aver riposizionato il flacone vuoto, fare clic su Finish.
4
Metodo
Preparazione della cartuccia del reagente
Quando la cartuccia di reagente è usata per la prima volta, è necessario seguire attentamente la
procedura riportata di seguito, per un'installazione accurata della stessa sullo strumento BIOFLASH. Nota: non utilizzare la cartuccia di reagente se si notano segni di danni.
Cartuccia del reagente QUANTA Flash DGP IgG: Durante la spedizione e la conservazione, le
microparticelle si depositano e richiedono una miscelazione per risospendersi.
1.
Al primo utilizzo della cartuccia, capovolgerla
delicatamente 30 volte, evitando la formazione
di schiuma. Verificare che la risospensione delle
microparticelle
sia
completa.
Se
la
risospensione delle microparticelle non è
completa, continuare a capovolgere la cartuccia
finché necessario. In caso di mancata
risospensione delle microparticelle, NON
UTILIZZARE LA CARTUCCIA.
2.
Una volta avvenuta la risospensione delle
particelle, posizionare la cartuccia del reagente
su una superficie solida per rimuovere la
linguetta a strappo rossa. Tenere ferma la
cartuccia del reagente con una mano. Con
l'altra mano afferrare saldamente la linguetta a
strappo rossa sul retro della cartuccia ed
estrarla completamente.
3.
Premendo le due linguette sui lati del tappo da
forare (parte grigia), esercitare pressione sulla
porzione superiore della cartuccia del reagente
fino allo scatto in posizione bloccata. Le
linguette non devono più essere visibili. NON
CAPOVOLGERE LA CARTUCCIA APERTA.
4.
Posizionare accuratamente la cartuccia del reagente in qualsiasi slot disponibile sul
dispositivo di caricamento girevole dei reagenti dello strumento BIO-FLASH.
Calibrazione del test
1.
Ogni nuovo lotto di cartucce di reagente deve essere calibrato prima del primo impiego. Il
software non consente l’uso di un nuovo lotto se non viene eseguita la calibrazione.
2.
Per istruzioni dettagliate su come calibrare la cartuccia del reagente, vedere la sezione
intitolata QUANTA Flash® DGP IgG Calibrators 701171 del presente inserto.
3.
Una volta che la cartuccia del reagente sarà stata calibrata, il lotto di cartucce su cui è stata
eseguita la calibrazione è pronto per l’uso.
Programmazione ed esecuzione dei campioni
1.
Premere il pulsante Worklist sulla parte superiore dello schermo e selezionare la scheda
Racks sulla parte inferiore.
2.
Selezionare il rack del campione da utilizzare evidenziandolo sullo schermo oppure
eseguendo la scansione del codice a barre con l’apposito lettore portatile. Eseguire la
5
scansione oppure digitare il nome del campione, selezionare il tipo di campione, il tipo di
contenitore (provetta/coppa) e selezionare DGP IgG dal pannello di test. Ripetere la
procedura per tutti i campioni.
3.
Caricare i campioni nelle posizioni selezionate nel rack dei campioni e caricare il rack nel
dispositivo di caricamento girevole dello strumento.
4.
Se tutti i materiali necessari sono caricati sullo strumento, l’icona Start F4 è disponibile e
accesa in verde sullo schermo. Premere l'icona Start F4 per avviare l'analisi.
Controllo della qualità
Il kit QUANTA Flash DGP IgG Controls (venduto separatamente – Numero articolo INOVA 701172)
contiene controlli DGP IgG positivi e negativi. Per istruzioni dettagliate su come inserire tutte le
informazioni richieste per ogni controllo nel software nonché su come eseguire i controlli, vedere la
sezione intitolata QUANTA Flash® DGP IgG Controls 701172 del presente inserto. Si raccomanda
di eseguire i controlli almeno una volta ogni giorno d’uso del test; tuttavia, gli utenti devono tenere in
considerazione anche la normativa nazionale/locale.
Calcolo dei risultati
Presso INOVA, viene prodotta una Curva master a sei punti per ogni nuovo lotto di QUANTA Flash
DGP IgG. I parametri della curva sono codificati nel codice a barre di ogni cartuccia di reagente.
Durante la calibrazione, per la conversione del valore RLU in CU viene usata una curva di lavoro
specifica dello strumento. La reattività dell’anticorpo IgG per DGP può quindi essere classificata in
base alla tabella seguente.
Reattività
Negativa
Debolmente positivo
Positiva
CU
<20
20-30
>30
La reattività in CU è direttamente collegata al titolo di anticorpi nel campione del paziente. Gli
aumenti e le diminuzioni delle concentrazioni di anticorpi del paziente saranno rispecchiate in una
corrispondente ascesa o diminuzione delle CU, proporzionale alla quantità di anticorpi.
L'intervallo di misurazione analitica (AMR) del dosaggio (determinato dai punti di minimo e massimo
della Curva master) è compreso tra 2,8 CU e 1936,7 CU, che corrisponde all'intervallo lineare del
dosaggio. Se il risultato di un paziente è inferiore a 2,8 CU, il sistema BIO-FLASH lo indicherà come
“<2,8 CU”. Dato che è inferiore a 20 CU, verrà considerato come un risultato negativo. Se il risultato
di un paziente è superiore a 1936,7 CU, il sistema BIO-FLASH lo indicherà come “>1936,7 CU”. Il
risultato verrà considerato positivo. Il software BIO-FLASH dispone di un’opzione di ripetizione
automatica. Se viene selezionata questa opzione, lo strumento analizzerà automaticamente di
nuovo qualsiasi campione abbia un risultato >1936,7 CU dopo un'ulteriore diluizione di 10 volte,
riportando così il valore misurato all'interno dell'intervallo AMR. Il risultato finale verrà calcolato dal
software tenendo conto del fattore di diluizione ulteriore. Dato che il valore massimo misurabile è
1936,7 CU, il valore massimo riferibile è 19.367 CU.
6
Interpretazione dei risultati
Ogni laboratorio deve verificare l'intervallo di riferimento fornito dal produttore e può stabilire il
proprio intervallo di normalità in base ai propri controlli e alle popolazioni di pazienti secondo le
procedure consolidate.
Si suggerisce che i risultati riportati dal laboratorio includano la dichiarazione: “I seguenti risultati
sono stati ottenuti con il test immunologico di chemiluminescenza INOVA QUANTA Flash DGP IgG.
I valori ottenuti con metodi di dosaggio di produttori diversi non possono essere utilizzati in modo
intercambiabile.”
Limiti della procedura
1.
Non tutti i pazienti con CD o DH sono positivi agli anticorpi IgG DGP.
2.
I risultati del test devono essere usati in combinazione ai reperti clinici e ad altri test
sierologici.
3.
La non correttamiscelazione dei reagenti prima del primo utilizzo potrebbe dare luogo a
risultati errati.
4.
Non sono stabilite prestazioni per matrici diverse dal siero.
Valori attesi
Il risultato atteso nella popolazione normale è “negativo”. La prevalenza della CD nella popolazione
di riferimento non a rischio è vicina all'1%19, pertanto è possibile prevedere risultati occasionali
positivi quando si testano soggetti sani. Quando sono stati testati campioni di siero tratti da 232
individui apparentemente santi con il test di chemiluminescenza QUANTA Flash DGP IgG presso
INOVA Diagnostics, sono stati ottenuti quattro risultati positivi e un risultato lievemente positivo.
Confronto metodologico con un predicate device
I campioni per l’analisi di confronto metodologico comprendevano i campioni tratti dagli studi di
validazione clinica (pazienti con CD, senza CD e con dermatite erpetiforme) che rientravano
nell'intervallo di misurazione analitico del test. Questi campioni sono stati testati con QUANTA Flash
DGP IgG e predicato ELISA.
Confronto metodologico
(N=241)
QUANTA Flash®
DGP IgG CIA
DGP IgG ELISA
Percentuale di accordo
(Confidenza 95%)
Positivo
Negativo
Total
e
Positivo
78
26*
104
Accordo positivi = 95,1% (88,0-98,7%)
Negativo
4**
133
137
Accordo negativo = 83,6% (77,0-89,0%)
Totale
82
159
241
Accordo totale = 87,6% (82,7-91,4%)
*Tredici campioni sono prelevati da pazienti con CD; tre seguivano una dieta priva di glutine. Un campione è
ottenuto da un paziente con sospetta CD positivo per IgA anti-DGP. Due campioni presentano gastrite da H.
pylori, due epatite virale e uno artrite reumatoide. Un paziente, con conta ematica ridotta, è positivo per IgG anti-htTG. Gli altri 6 campioni sono individui apparentemente sani; uno presentava sintomi gastrointestinali al momento
della raccolta del campione; due sono positivi per IgA anti-h-tTG.
**Tre campioni sono ottenuti da pazienti con CD e uno da un paziente con DH.
7
Sensibilità e specificità clinica
Lo studio di convalida clinica includeva 62 campioni con CD tratti dalla libreria di sieri INOVA
(compresi 7 deficit di IgA selettivo), 87 controlli senza malattia celiaca e 23 campioni ottenuti da
pazienti con DH. Uno studio esterno separato includeva 102 campioni di CD (tra cui 9 con deficit di
IgA selettivo), 151 campioni ottenuti da individui sintomatici che si erano rivolti a un medico e in cui
la CD era stata esclusa in base all'esame fisico e a test diagnostici e 98 controlli. Tutti i campioni
sono stati sottoposti a test con QUANTA Flash DGP IgG. I risultati sono stati analizzati al fine di
calcolare la sensibilità e la specificità per la CD (n=148), la CD con deficit di IgA selettivo (n=16) e la
DH (n=23) separatamente.
Sensibilità e specificità clinica del test QUANTA Flash DGP IgG nella CD:
Diagnosi
Analisi
N=484
Esenti
(Confidenza 95%)
CD
Totale
da CD
QUANTA Flash®
DGP IgG
Positivo
Negativo
Totale
132
16**
148
9*
327
336
141
343
484
Sensibilità = 89,2% (83,0-93,7%)
Specificità = 97,3% (95,0-98,8%)
* Due pazienti presentano gastrite da H. pylori, due epatite virale e uno artrite reumatoide. Gli altri campioni sono
stati ottenuti da soggetti apparentemente sani di cui due positivi per DGP IgG EIA.
** Dei 13 pazienti con dati ELISA, 10 erano DGP IgG EIA negativi.
Sensibilità e specificità clinica del test QUANTA Flash DGP IgG nella CD con deficit di IgA:
N=352
QUANTA Flash®
DGP IgG
Positivo
Negativo
Totale
CD (deficit
di IgA)
Diagnosi
Esenti da
CD
9
7
16
9
327
336
Totale
18
334
352
Analisi
(Confidenza 95%)
Sensibilità = 56,3% (29,9-80,2%)
Specificità = 97,3% (95,0-98,8%)
Sensibilità e specificità clinica del test QUANTA Flash DGP IgG nella DH:
Diagnosi
Analisi
N=359
Esente
(Confidenza
95%)
DH
Totale
da DH
Sensibilità = 69,6% (47,1-86,8%)
Positivo
16
9*
25
QUANTA Flash®
Specificità = 97,3% (95,0-98,8%)
Negativo
7**
327
334
DGP IgG
Totale
23
336
359
* Due campioni presentano gastrite da H. pylori, due epatite virale e uno artrite reumatoide. Gli altri campioni sono
stati ottenuti da soggetti apparentemente sani di cui due positivi per DGP IgG EIA.
**Cinque campioni erano anche negativi per DGP IgG EIA.
8
Distribuzione della popolazione di controllo dalla patologia usata nello studio di convalida:
Gruppo di pazienti
N
Negativo
Positivo
Percentuale di
positivi
Patologia epatica autoimmune
5
5
0
0%
Epatite virale
Malattia intestinale infiammatoria (Crohn +
colite ulcerosa)
Infezione da H. pylori
31
29
2
6%
17
17
0
0%
17
15
2
12%
Allergie alimentari
9
9
0
0%
Malattia reumatica sistemica
12
12
0
0%
Patologia tiroidea autoimmune
22
22
0
0%
Pazienti con sintomi gastrointestinali
11
11
0
0%
Diabete mellito di tipo I
14
14
0
0%
Artrite reumatoide
37
36
1
3%
Altra malattia infettiva (HIV, sifilide)
10
10
0
0%
Totale
185
180
5
3%
Riepilogo dei valori di sensibilità e specificità clinica nella CD in base ai gruppi di età:
Fascia di età
1 mesi – 2 anni
2 anni – 12 anni
12-21 anni
>21 anni
< 21 anni (totale)
Totale
DGP IgG
Sensibilità, %
Specificità, %
66,7
94,6
95,6
96,1
75,0
100,0
89,4
97,8
88,9
96,4
89,2
97,3
Precisione e riproducibilità
La precisione del test QUANTA Flash DGP IgG è stata valutata su 8 campioni contenenti varie
concentrazioni di anticorpi DGP IgG in accordo con CLSI EP5-A2 e i dati sono riassunti di seguito:
Intratest
Intertest
Tra un giorno e
l’altro
Totale
Campione
Numero di
replicati
Media
(CU)
SD
(CU)
CV (%)
SD
(CU)
CV (%)
SD
(CU)
CV (%)
SD
(CU)
CV (%)
1
80
5,8
0,2
3,1%
0,1
2,5%
0,1
2,0%
0,3
4,5%
2
80
16,8
0,5
3,0%
0,1
0,5%
0,2
1,5%
0,6
3,3%
3
80
20,7
0,5
2,5%
0,3
1,3%
0,5
2,2%
0,7
3,6%
4
80
24,6
0,5
1,9%
0,5
1,8%
0,4
1,5%
0,7
3,0%
5
80
85,1
1,9
2,2%
0,8
0,9%
2,5
2,9%
3,2
3,8%
6
80
411,6
7,7
1,9%
6,8
1,6%
9,4
2,3%
13,9
3,4%
7
80
791,0
24,3
3,1%
16,2
2,0%
5,9
0,7%
29,8
3,8%
8
80
1781,4
52,1
2,9%
27,9
1,6%
48,3
2,7%
76,3
4,3%
9
Inoltre, sono stati condotti studi di precisione presso tre diversi siti di test (INOVA Diagnostics, Inc. e
due siti di test esterni) al fine di valutare la riproducibilità. Presso il sito INOVA sono stati inclusi
come variabili due lotti di reagenti, due lotti di calibratori e due operatori. La Riproducibilità totale è
stata calcolata sulla base della precisione intratest, intertest, inter-lotto, inter-lotto di calibratori, tra
operatori e tra siti:
Intratest
Intertest
Tra lotti di
reagenti
Tra lotti di
calibratori
Tra
operatori
Tra siti
Totale
Media
(CU)
Numero
di
replicati
SD
(CU)
CV
(%)
SD
(CU)
CV
(%)
SD
(CU)
CV
(%)
SD
(CU)
CV
(%)
SD
(CU)
CV
(%)
SD
(CU)
CV
(%)
SD
(CU)
CV
(%)
Campione n.1
13,4
80
0,3
2,6
0,8
5,9
0,5
4,0
1,0
7,5
0,5
3,6
1,0
8,1
1,8
13,5
Campione n.2
21,0
80
0,5
2,3
1,2
5,5
0,7
3,5
1,5
7,3
0,8
4,0
1,5
7,6
2,7
12,9
Campione n.3
118,9
80
2,8
2,4
5,9
4,9
2,8
2,3
2,8
2,3
4,7
4,0
9,4
8,1
13,0
10,9
Campione
Intervallo di misurazione analitica
Il limite inferiore di rilevamento di questo test determinato in base a CLSI EP17-A è 469,2 RLU, che
è inferiore all'intervallo di misurazione analitica (2,8 CU). L'AMR da 2,8 CU a 1936,7 CU è lineare. È
stato condotto uno studio di linearità in base a CLSI EP6-A usando sei campioni sierici con varie
concentrazioni di DGP IgG. Tutti i sei campioni hanno mostrato singolarmente una linearità di
diluizione e i dati combinati hanno portato i seguenti risultati con regressione lineare:
Campione
Tutti i
campioni
Intervallo di test (CU)
Pendenza (IC 95%)
Intercettazione Y (95% IC)
R²
da 1,9 a 2565,4
1,03 (da 1,02 a 1,04)
4,78 (da -4,99 a 14,54)
1.00
I campioni positivi con risultati al di sopra dell'intervallo di misurazione analitico non mostrano effetto
gancio fino a 4323,7 CU nel test DGP IgG.
Interferenza, reattività crociata
Non è stata rilevata alcuna interferenza con l'emoglobina fino a 200 mg/dl, trigliceridi fino a
1000 mg/dl, colesterolo fino a 224,3 mg/dl, bilirubina fino a 10 mg/dl e IgM RF fino a 500 IU/ml.
Centottantacinque campioni tratti da pazienti con varie malattie autoimmuni e infettive sono stati
testati per valutare la reattività incrociata. Due dei 31 campioni con epatite virale, due dei 17 con
infezione da H. pylori e uno dei 37 con artrite reumatoide erano positivi al test immunologico della
chemiluminescenza DGP IgG. Nel complesso, cinque dei 185 campioni (3%) erano positivi e questo
indica una mancanza di reattività crociata.
10
QUANTA Flash® DGP IgG
Calibrators
701171
Per uso diagnostico In Vitro
Uso previsto
I calibratori QUANTA Flash DGP IgG sono concepiti per essere utilizzati con il test di
chemiluminescenza (CIA) QUANTA Flash DGP IgG. Ogni calibratore definisce un punto di
riferimento per la curva di lavoro usata per determinare i valori pressi in Unità di chemiluminescenza
(CU) nella misurazione degli anticorpi anti-IgG anti-DGP nel siero.
Riepilogo e principi della procedura
Il test di chemiluminescenza QUANTA Flash DGP IgG utilizza una Curva master predefinita
specifica per il lotto memorizzata nel codice a barre della cartuccia di reagente. I calibratori
QUANTA Flash DGP IgG sono concepiti per produrre una Curva di lavoro specifica per lo strumento
a partire dai parametri della Curva master, con un punto di decisione basato sulle caratteristiche di
prestazioni e sulla valutazione clinica del test di chemiluminescenza QUANTA Flash DGP IgG. I
calibratori sono testati su più strumenti con lotti multipli di reagenti prima dell’attribuzione di un
valore.
Reagenti
1.
Calibratore 1 QUANTA Flash™ DGP IgG: Due (2) provette con etichetta con codice a barre
che contengono 0,3 mL di reagente prediluito, pronto all'uso. I calibratori contengono
anticorpi umani IgG anti-DGP in tampone, stabilizzanti proteici e conservanti.
2.
Calibratore 2 QUANTA Flash™ DGP IgG: Due (2) provette con etichetta con codice a barre
che contengono 0,3 mL di reagente prediluito, pronto all'uso. I calibratori contengono
anticorpi umani IgG anti-DGP in tampone, stabilizzanti proteici e conservanti.
Avvertenze
1.
I calibratori contengono una sostanza chimica (cloramfenicolo 0,02%) ritenuta cancerogena
dallo Stato della California.
2.
L’azoturo di sodio viene usato come conservante. L’azoturo di sodio è un veleno e può
essere tossico se ingerito o assorbito attraverso la pelle o gli occhi. L’azoturo di sodio può
reagire con le tubature in piombo o rame e formare azidi metalliche potenzialmente
esplosive. Lavare i lavandini, se usati per lo smaltimento dei reagenti, con grandi volumi di
acqua per evitare l’accumulo di azide.
3.
Tutto il materiale di natura umana utilizzato nella preparazione dei calibratori per questo
prodotto è stato testato ed è risultato negativo alla presenza di anticorpi al virus
dell'immunodeficienza umana (HIV), dell'antigene superficiale dell'epatite B (HBsAg) e
dell'epatite C (HCV) in base a metodi approvati dalla FDA. Nessun metodo di prova tuttavia
può offrire l'assicurazione completa dell’assenza del virus dell’HIV, HCV o altri agenti
infettivi. Pertanto, i calibratori QUANTA Flash DGP IgG devono essere maneggiati come
materiale potenzialmente infettivo.20
4.
Utilizzare attrezzatura di protezione idonea quando si manipolano i reagenti forniti.
5.
I reagenti rovesciati devono essere puliti immediatamente. Durante lo smaltimento delle
scorie, rispettare tutti i regolamenti ambientali federali, statali e locali.
11
Precauzioni
1.
Questo prodotto è destinato a un uso diagnostico In Vitro.
2.
I calibratori QUANTA Flash DGP IgG sono concepiti per essere utilizzati con il test QUANTA
Flash DGP IgG.
3.
Non trasferire i reagenti dei calibratori in provette secondarie. I codici a barre sulle provette
vengono usati dallo strumento per abbinare i calibratori con il tipo di test corretto.
4.
Una volta che una provetta di un calibratore è stata aperta, può essere utilizzata per
massimo 8 ore se il calibratore viene conservato aperto, montato sullo strumento, dopodiché
il reagente deve essere eliminato.
5.
La contaminazione chimica dei reagenti può derivare da una pulizia o un risciacquo
inadeguati dello strumento. I residui di comuni sostanze di laboratorio come la formalina, la
candeggina, l’etanolo o di detergente possono causare interferenze nel test. Assicurarsi di
seguire la procedura di pulizia dello strumento raccomandata come specificato nel manuale
operatore di BIO-FLASH.
Condizioni di conservazione
1.
Conservare i calibratori sigillati a una temperatura compresa tra 2 e 8 °C. Non congelare. I
reagenti sono stabili fino alla data di scadenza se conservati e maneggiati in accordo alle
istruzioni.
2.
I calibratori aperti devono essere eliminati dopo 8 ore.
Procedura
1.
Ogni nuovo lotto di cartucce di reagente deve essere calibrato prima del primo impiego. Il
software non consente l’uso di un nuovo lotto se non viene eseguita la calibrazione.
2.
Ogni calibratore deve essere delicatamente miscelato prima dell’uso per garantire
l’omogeneità. Evitare la formazione di schiume, in quanto le bolle possono interferire con la
rilevazione del livello di liquidi degli strumenti. Stappare le provette del calibratore e
collocarle entrambe su un rack per campioni, con i codici a barre rivolti verso gli spazi nel
rack. Posizionare il rack dei campioni nel dispositivo di caricamento girevole dello strumento
BIO-FLASH e chiudere la porta. Lo strumento leggerà i codici a barre sulle provette del
calibratore e identificherà la cartuccia di reagente necessaria. Per istruzioni dettagliate
sull'analizzatore chemiluminescente BIO-FLASH e il software BIO-FLASH vedere il manuale
operatore fornito insieme al sistema BIO-FLASH.
3.
Lo strumento eseguirà ogni calibratore tre volte. Dopo che tutti i calibratori saranno stati
eseguiti, il software richiederà la convalida della calibrazione. Dalla schermata Instrument
Summary, fare clic sul pulsante freccia Choose more options – Ctrl-M (). Selezionare
Calibration Ctrl-F3. Nella finestra Calibrazione, evidenziare il test desiderato e fare clic su
Details.
4.
Nella nuova finestra Calibration Details, selezionare la calibrazione appena eseguita. Viene
visualizzata la Curva master sotto forma di linea tratteggia e la Curva di lavoro sotto forma di
linea continua. Se i risultati di calibrazione sono validi, nella regione in basso a destra della
schermata verrà visualizzato un pulsante di convalida. Fare clic sul pulsante Validate
Calibration .
5.
Una volta che la cartuccia del reagente sarà stata calibrata, il lotto di cartucce su cui è stata
eseguita la calibrazione è pronto per l’uso. Si raccomanda di eseguire i controlli QUANTA
Flash DGP IgG (venduti separatamente – codice 701172) dopo la calibrazione di un lotto di
cartucce di reagente.
Tracciabilità
Al momento non esiste alcuno standard internazionale riconosciuto per la misurazione degli
anticorpi IgG anti-peptidi di gliadina deamidati.
12
Limiti
Questi calibratori sono concepiti per 4 calibrazioni. Il tempo totale di permanenza delle provette di
calibratore aperte sullo strumento è di 8 ore. Se i calibratori vengono lasciati aperti, caricati, per un
periodo maggiore, devono essere eliminati. L'uso per oltre 8 ore delle stesse provette di calibratore
può causare una calibrazione errata del test e questo potrebbe dare luogo a risultati errati.
13
QUANTA Flash® DGP IgG
Controls
701172
Per uso diagnostico In Vitro
Uso previsto
I controlli QUANTA Flash DGP IgG sono concepiti per essere utilizzati per scopi di controllo della
qualità del test di chemiluminescenza (CIA) QUANTA Flash DGP IgG.
Riepilogo e principi della procedura
I controlli QUANTA Flash DGP IgG comprendono un Controllo negativo e un Controllo positivo.
Ciascuno contiene una diversa quantità di anticorpi IgG anti-DGP. Il controllo negativo e il controllo
positivo vengono usati per monitorare le prestazioni analitiche dell'immunodosaggio
chemiluminescente QUANTA Flash DGP Screen.
Reagenti
1.
Controllo negativo QUANTA Flash DGP IgG: Due (2) provette con etichetta con codice a
barre che contengono 0,5 mL di reagente pronto all'uso. I controlli contengono anticorpi
umani IgG anti-DGP in tampone, stabilizzanti proteici e conservanti.
2.
Controllo positivo QUANTA Flash DGP IgG: Due (2) provette con etichetta con codice a
barre che contengono 0,5 mL di reagente pronto all'uso. I controlli contengono anticorpi
umani IgG anti-DGP in tampone, stabilizzanti proteici e conservanti.
Avvertenze
1.
I controlli contengono una sostanza chimica (cloramfenicolo 0,02%) ritenuta cancerogena
dallo Stato della California.
2.
L’azoturo di sodio viene usato come conservante. L’azoturo di sodio è un veleno e può
essere tossico se ingerito o assorbito attraverso la pelle o gli occhi. L’azoturo di sodio può
reagire con le tubature in piombo o rame e formare azidi metalliche potenzialmente
esplosive. Lavare i lavandini, se usati per lo smaltimento dei reagenti, con grandi volumi di
acqua per evitare l’accumulo di azide.
3.
Tutto il materiale di origine umana utilizzato nella preparazione dei controlli per questo
prodotto è stato testato ed è risultato negativo alla presenza di anticorpi al virus
dell'immunodeficienza umana (HIV), dell’antigene superficiale dell’epatite B (HBsAg) e
dell’epatite C (HCV) in base a metodi approvati dall’FDA. Nessun metodo di prova tuttavia
può offrire l'assicurazione completa dell’assenza del virus dell’HIV, HCV o altri agenti
infettivi. Pertanto, i controlli QUANTA Flash DGP IgG devono essere maneggiati come
materiale potenzialmente infettivo.20
4.
Utilizzare attrezzatura di protezione idonea quando si manipolano i reagenti forniti.
5.
I reagenti rovesciati devono essere puliti immediatamente. Durante lo smaltimento delle
scorie, rispettare tutti i regolamenti ambientali federali, statali e locali.
Precauzioni
1.
Questo prodotto è destinato a un uso diagnostico In Vitro.
2.
I controlli QUANTA Flash DGP IgG sono concepiti per essere utilizzati con il test QUANTA
Flash DGP IgG.
3.
Non trasferire i reagenti dei controlli in provette secondarie. I codici a barre sulle provette
vengono utilizzati dallo strumento per identificare il controllo.
14
4.
Una volta aperta, ogni provetta di controllo può essere utilizzata per massimo 15 volte con
un tempo medio di 10 minuti sullo strumento per ciascun impiego, per un totale di 2 ½ ore.
5.
La contaminazione chimica dei reagenti può derivare da una pulizia o un risciacquo
inadeguati dello strumento. I residui di comuni sostanze di laboratorio come la formalina, la
candeggina, l’etanolo o di detergente possono causare interferenze nel test. Assicurarsi di
seguire la procedura di pulizia dello strumento raccomandata come specificato nel manuale
operatore di BIO-FLASH.
Condizioni di conservazione
1.
Conservare i controlli sigillati a una temperatura compresa tra 2 e 8 °C. Non congelare. I
reagenti sono stabili fino alla data di scadenza se conservati e maneggiati in accordo alle
istruzioni.
2.
I controlli sono concepiti per 15 impieghi, con un tempo medio di 10 minuti sullo strumento
per ciascun impiego. Il tempo totale di permanenza delle provette di controllo aperte sullo
strumento è di 2 ½ ore. Se i controlli vengono lasciati aperti, caricati, per più di 2 ore e
mezzo in totale, devono essere eliminati.
3.
Per una stabilità ottimale, rimuovere i controlli dal sistema subito dopo il campionamento
degli stessi e conservarli a una temperatura di 2-8 °C nella fiala originale chiusa.
Procedura
Creare nuovi materiali QC per il test DGP IgG:
1.
Prima di utilizzare i controlli QUANTA Flash DGP IgG per la prima volta sullo strumento,
inserire nel software il nome, il lotto, la data di scadenza, il valore (o la dose) e la deviazione
standard SD di destinazione.
2.
Dalla schermata Instrument Summary, fare clic sul pulsante freccia Choose more options
– Ctrl-M (). Selezionare QC Ctrl-F2. Fare clic sul pulsante New QC Material .
3.
Ogni set di Controlli comprende una scheda dati specifica per il lotto. Innanzitutto, inserire
nel software il nome, il numero del lotto e la data di scadenza contenuti in questa scheda
dati. Successivamente, fare clic sul pulsante Add Assay. Nella nuova finestra, assicurarsi di
avere selezionato la casella Show All Assays. Selezionare il dosaggio DGP_IgG dall'elenco
e fare clic su Add. Infine, inserire la dose di destinazione e la deviazione standard SD di
destinazione. Fare clic su Save. Eseguire questa procedura per entrambi i controlli.
Creare un nuovo lotto per i materiali QC esistenti:
1.
Prima di utilizzare un nuovo lotto di controlli QUANTA Flash DGP IgG per la prima volta,
inserire nel software il lotto, la data di scadenza, il valore (o la dose) e la deviazione standard
SD di destinazione.
2.
Dalla schermata Instrument Summary, fare clic sul pulsante freccia Choose more options
– Ctrl-M (). Selezionare QC Ctrl-F2. Evidenziare il test DGP_IgG nella colonna sulla
sinistra. Evidenziare il materiale di controllo appropriato sulla destra (“DGPGN” per il
Controllo negativo o “DGPGP” per il Controllo positivo). Fare clic sul pulsante New QC Lot.
3.
Ogni set di Controlli comprende una scheda dati specifica per il lotto. Inserire nel software le
informazioni contenute in questa scheda dati. Includere il numero di lotto, la data di
scadenza, la dose di destinazione e la deviazione standard SD di destinazione. Se
necessario, fare clic sul pulsante Add Assay. Nella nuova finestra, assicurarsi di avere
selezionato la casella Show All Assays. Selezionare il dosaggio DGP_IgG dall'elenco e fare
clic su Add. Fare clic su Save. Eseguire questa procedura per entrambi i controlli.
Si raccomanda di utilizzare i controlli QUANTA Flash DGP IgG una volta ogni giorno d'uso del test;
tuttavia, gli utenti devono considerare anche i requisiti nazionali/locali.
Ogni controllo deve essere delicatamente miscelato prima dell’uso per garantire l’omogeneità.
Evitare la formazione di schiume, in quanto le bolle possono interferire con la rilevazione del livello
di liquidi degli strumenti. Stappare le provette del controllo e collocarle entrambe su un rack per
15
campioni, con codici a barre rivolti verso gli spazi nel gap. Posizionare il rack dei campioni nel
dispositivo di caricamento girevole dello strumento BIO-FLASH e chiudere la porta. Lo strumento
leggerà i codici a barre sulle provette del controllo e identificherà la cartuccia di reagente necessaria.
Per istruzioni dettagliate sull'analizzatore chemiluminescente BIO-FLASH e il software BIO-FLASH
vedere il manuale operatore fornito insieme al sistema BIO-FLASH.
Tracciabilità
Al momento non esiste alcuno standard internazionale riconosciuto per la misurazione degli
anticorpi IgG anti-peptidi di gliadina deamidati.
Limiti
Questi controlli sono concepiti per 15 impieghi. L’etichetta di ogni provetta di controllo comprende
una fila di 15 caselle che possono essere selezionate per tracciare il numero di utilizzi. Il tempo
totale di permanenza delle provette di controllo aperte sullo strumento è di 2 ½ ore. Se i controlli
vengono lasciati aperti, caricati, per un periodo maggiore, devono essere eliminati.
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Bibliografia
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
15.
16.
17.
18.
19.
20.
Trier JS: Celiac Sprue. New England Journal of Medicine 1991, 325:1709-1719.
Troncone R and Ferguson A: Antigliadin antibodies. J Pediatr Gastroenterol Nutr 1991,
12:150-158.
Husby S, Koletzko S, Korponay-Szabó IR, Mearin mL, Phillips A, Shamir R, Troncone R,
Giersiepen K, Branski D, Catassi C, Lelgeman M, Mäki M, Ribes-Koninckx C, Ventura A,
Zimmer KP; ESPGHAN Working Group on Coeliac Disease Diagnosis; ESPGHAN
Gastroenterology Committee; European Society for Pediatric Gastroenterology, Hepatology,
and Nutrition. European Society for Pediatric Gastroenterology, Hepatology, and
Nutrition guidelines for the diagnosis of coeliac disease. J Pediatr Gastroenterol Nutr.
2012, 54:136-60.
McMillan SA, Haughton DJ, et al.: Predictive value for coeliac disease of antibodies to
gliadin, endomysium and jejunum in patients attending for jejunal biopsy. BMJ 1991,
303:1163-1165.
Sugai E, Moreno mL et al: Celiac disease serology in patients with different pre-test
probabilities: Is biopsy avoidable? World J Gastroenterol 2010, 16:3144-52.
Burgin-Wolff A, Gaze H, et al.: Antigliadin and antiendomysium antibody determination
for coeliac disease. Arch Dis Child 1991, 66:941-947.
Osman AA, et al.: B-Cell epitopes of gliadin. Clin Exp Immunol 2000, 121:248-254.
Aleanzi M, et al.: Celiac disease: Antibody recognition against native and selectively
deamidaion gliadin peptides. Clinical Chemistry 2001, 47:2023-2028.
Schwertz E, et al.: Serologic assay based on gliadin-related nonapeptides as a highly
sensitive and specific diagnostic aid in celiac disease. Clinical Chemistry 2004, 50:23702375.
Fleckenstein B, Qiao S-W, et al: Molecular characterization of covalent complexes
between tissue transglutaminase and gliadin peptides. J Biol Chem 2004, 279:17607-16.
Prince HE: Evaluations of the INOVA Diagnostics Enzyme-Linked Immunosorbent
Assay Kits for Measuring Serum Immunoglobulins G (IgG) and IgA to Deamidated
Gliadin Peptides. Clinical and Vaccine Immunology 2006, 13:150-151.
Sugai E, et al.: Accuracy of Testing Antibodies to Synthetic Gliadin-Related Peptides in
Celiac Disease. Clinical Gastroenterology and Hepatology 2006, 4:1112-1117.
Kurppa K, Lindfors K, et al: Antibodies against deamidated gliadin peptides in early
stage celiac disease. J Clin Gastroenterol 2010 (epub ahead of print).
Volta U, Granito A, et al: Deamidated gliadin peptide antibodies as a routine test for
celiac disease. J Clin Gastroenterol 2010, 44:186-90.
Collin P, et al.: Selective IgA deficiency and coeliac disease. Scand Journal
Gastroenterology 1992, 27:367-371.
Smecuol E, et al.: Permeability, Zonulin Production, and Enteropathy in Dermatitis
Herpetiformis. Clinical Gastroenterlogy and Hepatology 2005, 3:335-341.
Beutner EH, et al.: Sensitivity and Specificity of IgA-class anti-endomysial antibodies
for dermatitis herpetiformis and findings relevant to their pathogenic significance.
Journal of the American Academy of Dermatology 1986, 15:464-473.
Jaskowski TD, Donaldson MR et al: Novel screening assay performance in pediatric
celiac disease and adult dermatitis herpetiformis. JPGN 2010, 51:19-23.
Fasano A, Berti I, et al: Prevalence of celiac disease in at-risk and not-at-risk groups in
the United States: a large multicenter study. Arch Intern Med 2003, 163:286-92.
Biosafety in Microbiological and Biomedical Laboratories. Centers for Disease Control
and Prevention/National Institutes of Health, 2009, Fifth Edition.
17
Simboli utilizzati
Dispositivo medico diagnostico In vitro
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Codice del lotto
Numero di catalogo
Data di scadenza
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Controllo negativo
Calibratore 1
Calibratore 2
Contenitore della carta riciclata
Questa estremità verso l’alto
QUANTA Flash è un marchio depositato di INOVA Diagnostics Inc. BIO-FLASH è un marchio
depositato di Biokit S.A. © 2013
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621170ITA
Dicembre 2013
Revisione 2
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