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PIANO NAZIONALE DI CONTROLLO DELLE SALMONELLOSI NEGLI
AVICOLI: RUOLO DEL CENTRO DI REFERENZA
Veronica Cibin, SCS1 – Analisi del Rischio
I° Convegno rete Enter-Vet, 17/12/2014_IZSVE
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Controllo delle zoonosi
Regolamento CE n.2160/2003 del 17 novembre
2003 sul controllo della salmonella e di altri agenti
zoonotici specifici presenti negli alimenti
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Zoonosi ed
agenti zoonotici
Tutti i
sierotipi di
salmonellae
rilevanti per
la sanità
pubblica
Popolazione
animale
Segmento della
catena
alimentare
Obiettivo
fissato entro
(+ 6 mesi)
Obbligatorietà
piani di
controllo da
(+ 6 mesi)
Riproduttori
specie Gallus
gallus
Produzione
primaria
12.12.2004
12.06.2006
Galline ovaiole
Produzione
primaria
12.12.2005
12.06.2007
Polli da carne
Produzione
primaria
12.12.2006
12.06.2008
Tacchini
Produzione
primaria
12.12.2007
12.06.2009
Suini da
ingrasso
Macellazione
12.12.2007
12.06.2009
Suini
riproduttori
Produzione
primaria
12.12.2008
12.06.2010
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PER CIASCUNA CATEGORIA PRODUTTIVA
Regolamento UE 200/2010 per riproduttori Gallus gallus,
Regolamento UE 517/2011 per galline ovaiole,
Regolamento UE 200/2012 per polli da carne,
Regolamento UE 1190/2012 per tacchini da ingrasso e riproduttori
Obiettivo definitivo, ovvero la percentuale massima di gruppi positivi a
sierotipi rilevanti per la salute pubblica: pari ad 1%
Obiettivo modulare per galline ovaiole
• 10 % se la prevalenza nell’anno precedente era inferiore al 10 %;
Sierotipi rilevanti: Enteritidis, Typhimurium (compresa variante monofasica),
Hadar, Infantis, Virchow per riproduttori Gallus gallus; SE,ST per altre
categorie produttive
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Ciascun Regolamento specifico definisce
- Frequenza minima campionamenti per allevamento
- Numero di gruppi da controllare e frequenza di controllo per ciascun gruppo
- Cosa campionare e come
- Modalità e tempi trasporto campioni e procedure di analisi
sia per autocontrollo e controlli ufficiali
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PIANO
NAZIONALE DI
CONTROLLO
DELLE
SALMONELLOSI
NEGLI AVICOLI
Anno 2015
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ATTIVITA’ DEL CRNS nell’ambito dei piani di controllo salmonella (1)
Supporto tecnico scientifico al Ministero della Salute, alla Commissione
Europea e altre enti (EFTA S.A.)
- Collaborazione con DIREZIONE GENERALE DELLA SANITA’ ANIMALE
E DEI FARMACI VETERINARI, Ufficio II (Sanità animale ed
Anagrafi zootecniche) nella revisione delle proposte normative (UE,
nazionali) e nella stesura dei piani nazionali di monitoraggio e controllo delle
infezioni di salmonella nelle popolazioni animali
- Partecipazione a
-DGSANCO-SCFCAH (Standing Committee on the Food Chain and Animal
Health) – Working group on zoonoses
- Network on zoonoses data collection, EFSA
-Task force for control programmes of foodborne zoonoses, subgroup
Salmonella, DGSANCO
- Missioni organizzate da EFTA Surveillance Authority relative a monitoraggio
e controllo zoonosi
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ATTIVITA’ DEL CRNS nell’ambito dei piani di controllo salmonella (2)
Analisi di laboratorio:
• Isolamento e tipizzazione di ceppi di salmonella in campioni prelevati a
livello di produzione primaria dall’Autorità Competente (territorio di
competenza dell’IZSVe)
•Isolamento e tipizzazione di ceppi di salmonella in campioni prelevati a
livello di produzione primaria dall’Autorità Competente nei casi di
“circostanze eccezionali” (a livello nazionale)
• Tipizzazione di ceppi di salmonella isolati a seguito di campioni ufficiali
o in regime di autocontrollo e trasmessi da altri laboratori
• Fagotipizzazione di ceppi di Salmonella Enteritidis and Typhymurium
(monophasic ST), inclusi i ceppi trasmessi da altri laboratori ufficiali
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ATTIVITA’ DEL CRNS nell’ambito dei piani di controllo salmonella (3)
Supervisione e coordinamento delle attività dei laboratori che
eseguono le analisi nell’ambito del piano di controllo
attraverso
 organizzazione
sierotipizzazione)
dei
cricuiti
interlaboratorio
(isolamento
e
Training
Supporto nella risoluzione di problemi, dubbi nella gestione dei
campioni
Messa a punto di procedure analitiche
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ATTIVITA’ DEL CRNS nell’ambito dei piani di controllo salmonella (4)
• Spedizione degli isolati al laboratorio nazionale di Riferimento per
l’antibiotico resistenza in accordo alla Decisione 652/2013
• Inserimento dei dati relativi ai campioni prelevati dall’autorità
Competente Regione Veneto nel Sistema Informativo Salmonelle (S.I.S)
•Supporto a IZS Abruzzo e Molise (COVEPI) per quanto riguarda gli
aspetti tecnici (nomenclatura dei sierotipi di salmonella, lista dei vaccini,
etc....) e identificazione e segnalazione aspetti critici relativi a
inserimento dei dati in SIS
VALUTARE LA NECESSITA’ DI CHIEDERE INSERIMENTO DI
SIEROTIPIZZAZIONI PARZIALI
• Supporto alle Autorità Competenti sia a livello locale che nazionale
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Numero di analisi del CRNS nell’ambito dei piani di controllo
2010
2011
2012
2013
2014
(fine
settembre)
Salmonella
isolation (primary
production)
1922
1770
1665
1616
1097
N. of non
compliant
samples
45
173
57
76
6
Serotyping
288
151
159
56
49
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LABORATORI CHE ESEGUONO LE ANALISI DEI CAMPIONI NELL’AMBITO DEL PNCS
HANNO UN RUOLO CHIAVE
PIANO 2015
-Valutare
la conformità
campioni del campione e la
Il laboratorio
verificadei
la conformità
- Garantire
la rapida
e completa
dei campioni,
completezza
della
scheda gestione
di accompagnamento
analisi
e refertazione
campioni.
In caso di carenze di conformità, contatta il
 risultati
delle analisiprima
devono
disponibili
prima
verbalizzante
di essere
procedere
all’analisi.
dell’invio al macello degli animali
identificazione di sierotipi rilevanti per la salute pubblica
comporta la messa in atto di misure sanitarie
Per dettagli:
Pino nazionale di controllo delle salmonellosi negli avicoli
Note del Ministero della Salute: MAGGIO 2013; SETTEMBRE 2014 (post FVO)
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ALCUNI DETTAGLI RISPETTO ALLA GESTIONE DEI
CAMPIONI IN LABORATORIO
DAL RICEVIMENTO DEI CAMPIONI ALLA REFERTAZIONE
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CONFERIMENTO CAMPIONI (trasporto)
I campioni vanno inviati al laboratorio di analisi entro 24 ore dal prelievo
Trasporto a temperatura ambiente al riparo da calore (>25°C) e luce solare
diretta
MEGLIO A TEMPERATURA DI REFRIGERAZIONE
In laboratorio conservazione a T di refrigerazione ed analisi entro 48 ore dal
ricevimento; comunque l’analisi deve avvenire entro 96 ore dal prelievo
(ovvero 4 giorni)
Presso il laboratorio i campioni devono essere conservati a temperatura di
refrigerazione fino all’analisi, in ogni caso eseguita entro 4 giorni dal prelievo.
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ACCETTAZIONE DEI CAMPIONI UFFICIALI: CRITICITA’
INCONGRUENZE NELLA SCHEDA ACCOMPAGNATORIA
INCONGRUENZE RELATIVE AL NUMERO DI CAMPIONI
POLVERE NON SUFFICIENTE
MANCATO RISPETTO DEI TEMPI
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INCONGRUENZE NELLA SCHEDA ACCOMPAGNATORIA
Le schede accompagnatorie richiedono le stesse informazioni che
devono essere inserite in SIS e sono predisposte dal Ministero in
collaborazione con COVEPI
ERRORI COMUNI:
-ERRORI RELATIVI AI DATI ANAGRAFICI/PRODUTTIVI
-NUMERO/TIPO DI CAMPIONI DIVERSO DA QUANTO REALMENTE
CONFERITO
-DATI MANCANTI: ATTENZIONE SE SI TRATTA DI DATI RELATIVI AL
VACCINO
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INCONGRUENZE RELATIVE AL NUMERO DI CAMPIONI
ERRORE PIU’ FREQUENTE:
-NUMERO DI CAMPIONI INFERIORE A QUANTO PREVISTO
ATTENZIONE A NUMERO DI CAMPIONI PER GRUPPO
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POLVERE NON SUFFICIENTE
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MANCATO RISPETTO DEI TEMPI
ERRORE PIU’ FREQUENTE:
-INIZIO ANALISI MAGGIORE A 4 GIORNI DALLA DATA PRELIEVO
CONFERITORE
TRASPOSTO INTRA IZS
LABORATORIO DI ANALISI
In caso di festività è utile informare i servizi veterinari quali sono i giorni utili per
il laboratorio/struttura che ricee I campioni
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METODI DI ANALISI
Isolamento: ISO 6579-2002/amd1:2007: MSRV come unico terreno di
arricchimento selettivo (LABORATORI ACCREDITATI)
Tipizzazione sierologica secondo lo schema Kauffman-White-Le Minor
Per i campioni in autocontrollo possibili metodi alternativi purché convalidati in
conformità della norma EN/ISO 16140/2003
Laboratorio che esegue le analisi e flusso delle informazioni deve essere
chiaramente riportato nel piano di autocontrollo
In caso di campioni ufficiali è prevista sempre la sierotipizzazione “completa”
In caso di campioni in autocontrollo è prevista la sierotipizzazione completa per:
Riproduttori Gallus gallus e tacchini
Possibilità di escludere/confermare la sola presenza di SE/ST in caso di polli da
carne, tacchini da ingrasso e galline ovaiole
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CHIARIMENTI SULLE MODALITA’ DI PREPARAZIONE DEI CAMPIONI
VANNO TENUTI SEPARATI I CAMPIONI DI GRUPPI DIVERSI
Campioni della medesima matrice possono essere analizzati in pool a
discrezione dal laboratorio
sovrascarpe nelle ovaiole
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Divieto di utilizzare vaccini vivi non distinguibili da ceppi di campo
Il laboratorio di analisi effettua test discriminatorio sulla
base delle informazioni riportate sulla scheda
accompagnatoria campioni
Gallivac SE, Merial (KIT IDT Salmonella Diagnosticum)
Avipro Salmonella Vac T e AviPro Salmonella Vac E, e DUO Lohmann (non cresce
nel terreno MSRV)
Nel caso in cui il richiedente l’analisi lo ritenga opportuno, sulla base delle
informazioni a sua disposizione, potrà richiedere al laboratorio in via
eccezionale, di procedere ad effettuare il test discriminatorio anche nei
confronti del ceppo vaccinale riferibile al vaccino Gallivac SE.
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REFERTAZIONE CAMPIONI UFFICIALI (1)
SI EVIDENZIA CHE I LABORATORI DEVONO GARANTIRE RISPOSTE
ANALITICHE NEL TEMPO PIÙ BREVE POSSIBILE, POICHÉ LA RICERCA E
SIEROTIPIZZAZIONE DELLE SALMONELLE HANNO CARATTERE DI PRIORITÀ.
I risultati di tali analisi devono essere comunicati rapidamente al richiedente l’analisi
ed in ogni caso l’assenza di Salmonella nel campione esaminato, deve essere
comunicata entro 5 giorni lavorativi dalla data di inizio analisi.
Si ritiene di fondamentale importanza, in caso di positività, indicare già in prima
istanza il sierotipo isolato, e non una generica presenza di Salmonella spp.
FVO
MINISTERO
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Nota SETTEMBRE 2014: PNCS – Relazione FVO e azioni per la rimozione delle
criticità rilevate
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REFERTAZIONE CAMPIONI UFFICIALI (2)
A fronte di reali difficoltà che possono intercorrere nel corso
dell’identificazione del sierotipo di appartenenza degli isolati, a
garanzia della rapidità dell’emissione dell’esito, il laboratorio che
esegue la sierotipizzazione, valuta l’opportunità di emettere un
rapporto di prova in cui si evidenzi l’esclusione di sierotipi
appartenenti a S. Enteritidis e Typhimurium (per i quali è prevista
l’applicazione di misure sanitarie restrittive) e che prosegua solo
successivamente e nei tempi consoni alla sierotipizzazione completa.
In caso di identificazione di sierotipi rilevanti il
laboratorio che ha effettuato l’isolamento o la
sierotipizzazione dovrà procedere ad effettuare il test
che consente di differenziare il ceppo vaccinale dal
ceppo di campo, ed il risultato di tale test dovrà
essere riportato nel rapporto di prova.
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INSERIMENTO DATI IN SIS
INSERIMENTO SIEROTIPIZZAZIONI INCOMPLETE
Valutare l’opportunità e il significato epidemiologico dell’inserimento nei
sistemi informativi di formule antigeniche incomplete
Proposta
Indicare specie e subspecie
+
"sierotipo non identificato" o "formula antigenica incompleta."
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GRAZIE PER L’ATTENZIONE
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