S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale Patologie da BIOTERRORISMO Un numero limitato di microrganismi, che causano malattia e morte, può essere utilizzato in attacchi di bioterrorismo. Oltre al Bacillus anthracis e al virus del vaiolo, indicati quali potenziali armi biologiche, questo termine include diversi tipi di microrganismi di animali, piante e umani e alcuni loro prodotti quali le tossine. Bioterrorismo è correttamente inteso quale l’uso di agenti biologici per causare malattie e/o morte di uomini, animali o piante. Sono considerati potenziali armi biologiche: Bacillus anthracis (antrace o carbonchio); la tossina del Clostridium botulinum; Yersinia pestis (peste); Francisella tularensis (tularemia); il virus del vaiolo e i virus delle febbri emorragiche [Arenavirus (Lassa) e Filovirus (Ebola)]. Le Brucelle (brucellosi) sono state recentemente rimosse dalla lista delle potenziali armi biologiche, pur rimanendo un possibile agente insieme a: Coxiella burnetii (febbre Q); Burkholderia mallei (melioidosi); Vibrio cholerae; enterotossina B stafilococcica, micobatteri multiresistenti, e gli agenti delle encefaliti virali: flavivirus (dengue e febbre gialla), hantavirus e arenavirus (Lassa). Bacillus anthracis Generalità Il Bacillus anthracis è tra i primi nella lista dei potenziali agenti patogeni utilizzabili nel bioterrorismo. È stato isolato e caratterizzato da Robert Koch, che ha descritto le sue caratteristiche culturali e morfologiche nel 1867. Caratteristiche morfologiche e colturali Il B. anthracis forma grossi bastoncini gram-positivi disposti a catenelle, è aerobio, immobile, capsulato e sporigeno. Le spore, che si formano solo in presenza di ossigeno, sono ovali, subterminali, ma non rigonfiano lo sporangio. La resistenza delle spore del B. anthracis è rimarchevole, in quanto possono sopravvivere nel terreno fino a 40 anni. 1 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale Figura 1. Colorazione di Gram del Bacillus anthracis Bacilli del carbonchio Gram-positivi nello striscio di sangue periferico ottenuto da una scimmia rhesus deceduta per carbonchio inalatorio (JAMA 281:1735-1745, 1999). I criteri di identificazione sono: le forme caratteristiche all’esame microscopico dopo colorazione con Gram, la morfologia delle colonie, la presenza di spore e l’immobilità. Patogenesi Il carbonchio è una malattia che colpisce soprattutto gli erbivori (pecore, bovini ed equini), che si infettano ingerendo le spore presenti nel terreno. Le spore germinano quando entrano in un ambiente ricco di aminoacidi, nucleosidi e glucosio, ad esempio il sangue o i tessuti dell’ospite in prossimità dei punti d’entrata. Diversamente, quando le sostanze nutritive si sono esaurite oppure quando i liquidi contenenti i bacilli del carbonchio sono esposti all’aria, si formano solo spore. I bacilli vegetativi si moltiplicano rapidamente con la formazione di un edema gelatinoso con congestione. Di raro la malattia colpisce l’uomo, quasi esclusivamente allevatori, conciatori e contadini, che vengono a contatto con pelli, lana ed altri prodotti degli animali. La massima virulenza del bacillo del carbonchio richiede la presenza sia della capsula (attività antifagocitaria) e sia della tossina multifattoriale carbonchiosa formata da tre proteine: fattore edematogeno (EF = edema factor), fattore letale (LF = lathal factor) e antigene proteggente (PA = protective antigen). Anticorpi diretti verso l’antigene proteggente, che è in grado di interagire con un recettore di membrana ubiquitario nelle cellule animali, provocano la neutralizzazione. I batteri vegetativi hanno una limitata sopravvivenza al di fuori dell’ospite, inferiore alle 24 ore, in netto contrasto alla pluridecennale resistenza nell’ambiente delle spore. 2 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale Diagnosi Il bacillo del carbonchio può essere isolato da: liquido e pus raccolti dalle lesioni cutanee, campioni respiratori (espettorato), feci, liquor e sangue. Il test microbiologico di maggiore utilità è la classica emocoltura, che dovrebbe evidenziare una crescita in 6 – 24 ore. La conferma della crescita si ottiene isolando il batterio in coltura (in piastre di agar-sangue). Se il laboratorio è stato allertato sulla possibile presenta del B. anthracis, le prove biochimiche e la morfologia delle colonie (aspetto a caput medusae) dovrebbero consentire una diagnosi presuntiva dopo 12-24 ore. La conferma della diagnosi deve essere fatta con test diretti del tipo ELISA per l’antigene proteggente e amplificazione genica (PCR), che sono disponibili sono in laboratori di riferimento e richiedono 1-2 giorni per il loro completamento. Questi test devono essere impiegati nei falsi casi di carbonchio e nelle analisi di materiale sospetto. Negli ultimi 4-5 anni sono stati descritti test molecolari di identificazione e tipizzazione. Sono state identificate sequenze specifiche e conservate (Ba8113 di 277 bp) e le prove di amplificazione genica hanno confermato una ottima specificità e sensibilità di circa10 spore in 100 gr di terreno. Recentemente l’impiego di metodiche di PCR in tempo reale ha consentito l’identificazione di B. anthracis in campioni diversi (ad es. 100 litri di aria filtrati) in meno di 1 ora. Inoltre l’impiego di due sonde consente l’analisi delle temperature di annealing e di melting con una accurata tipizzazione. Biosicurezza La manipolazione di alcuni agenti biologici utilizzabili nel Bioterrorismo (B. anthracis, Y. pestis, e i campioni contenenti tossine botuliniche) può essere fatta senza rischio per gli operatori applicando le procedure di BioSafety Level 2 (BSL 2). Brevemente, i laboratori BSL 2 devono ovviamente applicare le procedure di BSL 1 (i protocolli di sicurezza generale quali il divieto di mangiare e bere in laboratorio e l’obbligo di lavarsi le mani prima di uscire dal laboratorio). Devono inoltre soddisfare alcuni requisiti specific1: laboratori BSL 2 diretti da ricercatori competenti, accesso controllato ai laboratori e segnali visibili di rischio biologico. Il personale dei laboratori BSL2 deve esser stato specificamente istruito nella manipolazione di agenti patogeni e nell’uso appropriato dell’equipaggiamento protettivo (camici, guanti e mascherine per il viso). Le procedure per lo smaltimento controllato di strumenti appuntiti e del materiale infetto devono essere attivate e documentate da un registro di biosicurezza. Tutte le procedure di laboratorio devono esser eseguite con l’obiettivo di minimizzare la produzione di aerosol. La vaccinazione non è necessaria per un’attività limitata. 3 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale La decontaminazione di superfici e strumentazione si esegue con ipoclorito di sodio (5%), che è attivo alla diluizione 1:10. MODALITA’ DI TRASMISSIONE Il Bacillus anthracis causa normalmente patologia tra gli erbivori; accidentalmente si trasmette all’uomo tramite il contatto con animali infetti o loro prodotti o per inalazione di spore presenti nell’ambiente o per ingestione di carne poco cotta di animali infetti. La trasmissione interumana è estremamente rara ed è stata dimostrata solo per via cutanea tramite materiale infetto. MANIFESTAZIONI CLINICHE LOCALIZZAZIONE CUTANEA (95%): papula pruriginosa localizzata più frequentemente agli arti o alle mani che aumenta progressivamente di dimensioni e si ulcera in superficie, circondata da vescicole. La lesione ha di solito un diametro di 2-3 cm, è rotondeggiante e non dolorosa. Dopo 2-3 settimane evolve in escara che poi lascia una cicatrice permanente. La lesione può essere accompagnata da linfoadenopatia locale e da malessere generale, febbre e cefalea. LOCALIZZAZIONE POLMONARE: iniziale sintomatologia simil – influenzale con astenia, febbricola, tosse. Comparsa dopo 1-2 giorni di dispnea, tosse secca, febbre elevata, talvolta accompagnate da ematemesi e melena. La radiografia del torace può documentare broncopolmonite a focolai disseminati, allargamento del mediastino e versamento pleurico. Tale patologia è gravata da un’elevata letalità. Il decorso può essere rapidamente fatale in paziente con sensorio integro o il decesso può sopraggiungere dopo insorgenza di shock settico ed eventuale disseminazione meningea del microrganismo. LOCALIZZAZIONE INTESTINALE: l’ingestione di carne contaminata può portare dopo 3-7 giorni a due differenti forme cliniche: addominale e orofaringea. Antrace addominale: insorgenza di nausea, vomito, anoressia, febbre seguiti da dolori addominali, ematemesi e diarrea sanguinolenta. Successivamente uno stato tossico con shock settico e cianosi portano al decesso nel 25-60% dei casi. Presenza di lesioni ulcerative soprattutto a livello del cieco e del colon. Antrace orofaringea: faringodinia, disfagia, febbre, linfoadenopatia laterocervicale; presenza di edema e necrosi tissutale con formazione di lesioni ulcerative della mucosa orofaringea, del palato duro e delle tonsille. MENINGITE: la localizzazione meningea può costituire una complicanza di una delle precedenti forme in circa il 5% dei casi. PREVENZIONE 4 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale Il vaccino disponibile per uso umano è prodotto da ioPort Corporation, Lansing, Michigan, ed è un vaccino costituito da un filtrato di colture di un ceppo di B. anthracis privo di capsula e non virulento che produce l’antigene protettivo (vaccino vivo attenuato). Esso viene somministrato per via sottocutanea in 6 dosi, rispettivamente a 0, 2, 4 settimane e dopo 6, 12 e 18 mesi con necessità di un richiamo annuale. L’efficacia dimostrata è del 92.5%. La vaccinazione è raccomandata nei seguenti gruppi: personale di laboratorio a contatto con B. anthracis, persone a contatto con animali o con prodotti animali provenienti da aree ad elevata incidenza di antrace o dove le misure di controllo siano insufficienti, militari impiegati in aree ad alto rischio. Per essere efficace il ciclo vaccinale deve essere eseguito almeno 18 mesi prima del contatto a rischio. Non vi è necessità di isolamento dei pazienti affetti da antrace. Fig. A Paziente presentatosi con una lesione al volto pruriginosa e non dolente, associata a linfoadenopatia regionale 5 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale Fig. B La colorazione di Gram del fluido vescicolare rivela la presenza di bacilli capsulati tipizzati poi come B. anthracis Iconografia tratta da Mandell, Douglas, and Bennett’s Principles and Practice of Infectious Diseases, Fifth Edition TERAPIA Le raccomandazioni inerenti l’uso di antibiotici e vaccino nella eventualità di un attentato di bioterrorismo sono condizionate da un numero limitato di esperimenti sugli animali e dalla mancanza di studi clinici sull’antrace da inalazione nell’uomo. Dato il decorso estremamente rapido della forma inalatoria dell’adulto, la somministrazione i fase precoce di antibiotici è ritenuta essenziale. Un ritardo di poche ore potrebbe compromettere le possibilità di sopravvivenza. La maggior parte dei ceppi di B.anthracis è sensibile alla penicillina e questo è stato il trattamento storico di elezione. La FDA approva l’uso di penicillina o in alternativa di doxiciclina. La ciprofloxacina ed i fluorchinoloni non sono stati studiati sull’uomo, ma prove sull’animale ne suggeriscono una eccellente efficacia.(41,56,57) Si può assumere come verosimile che un uso a fini terroristici dell’antrace si avvarrebbe di ceppi resistenti e quindi esistono sufficienti consensi all’uso di ciprofloxacina nell’adulto con diagnosi sospetta di antrace da inalazione. Per quanto riguarda la via di somministrazione, nel caso di episodi sporadici, viene consigliata la via endovenosa. Nel caso di attentato di massa, per ragioni di reperibilità del farmaco e di praticità di somministrazione, viene data la preferenza alla via orale. 6 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale La durata della terapia antibiotica deve essere almeno di 60 giorni (a causa della possibilità di germinazioni ritardate di spore), sostituendo appena possibile alla somministrazione endovenosa quella orale. La contemporanea somministrazione di vaccino (tre dosi a 0-2-4 settimane) può consentire di ridurre la durata della terapia a 30-45 giorni. Il trattamento della forma cutanea si può avvalere della terapia orale con ciprofloxacina o doxiciclina o amoxicillina, così come indicato nelle tabelle. Sebbene la durata della terapia nella forma cutanea sarebbe di 10 giorni, le raccomandazioni (per la forte probabilità di aver anche inalato spore) sono per la prosecuzione della terapia a 60 giorni. La terapia topica non ha alcun effetto. Il B.anthracis è sensibile in vitro a numerosi antibiotici quali cloramfenicolo, penicilline protette, macrolidi, vancomicina e cefalosporine di prima generazione. L’uso di tali antibiotici è però raccomandabile solo in caso di indisponibilità degli altri di prima scelta.(58,59,64) Profilassi post-esposizione La stessa terapia che per i casi clinici conclamati. Pazienti speciali Bambini. E’ noto come l’uso dei fluorchinoloni non sia raccomandato al di sotto dei 18 anni. Ciononostante esistono raccomandazioni al loro impiego a causa della loro sicura efficacia, con eventuale sostituzione dopo la verifica della sensibilità in vitro del germe isolato. Il vaccino non è mai stato testato nei giovani sotto i 18 anni, ma l’esperienza con vaccini inattivati similari suggerisce una sua sicurezza ed efficacia. Donne in gravidanza. Medesimo ragionamento che per i bambini. In caso di sensibilità accertata alla penicillina, se ne raccomanda l’uso endovena (v. tab….) 7 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale 8 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale Tabelle riprese da: Anthrax as a Biological Weapon (JAMA. 1999;281:1735-1745) REFERENCES 1. Carter A, Deutsch J, Zelicow P. Catastrophic terrorism. Foreign Aff. 1998;77:80-95. 2. Lew D. Bacillus anthracis (anthrax). In: Mandell GL, Bennett JE, Dolin R, eds. Principles and Practices of Infectious Disease.New York, NY: Churchill Livingstone Inc; 1995:1885-1889. 3. Christopher GW, Cieslak TJ, Pavlin JA, Eitzen EM. Biological warfare: a historical perspective. JAMA. 1997;278:412-417. MEDLINE 4. Cole LA. The specter of biological weapons. Sci Am. December 1996:60-65. 5. Zilinskas RA. 9 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale Iraq's biological weapons: the past as future? JAMA. 1997;278:418-424. MEDLINE 6. Public Health Service Office of Emergency Preparedness. Proceedings of the Seminar on Responding to the Consequences of Chemical and Biological Terrorism. Washington, DC: US Dept of Health and Human Services; 1995. 7. WuDunn S, Miller J, Broad W. How Japan germ terror alerted world. New York Times. May 26, 1998:1-6. 8. Meselson M, Guillemin J, Hugh-Jones M, et al. The Sverdlovsk anthrax outbreak of 1979. Science. 1994;266:1202-1208. MEDLINE 9. World Health Organization. Health Aspects of Chemical and Biological Weapons. Geneva, Switzerland: World Health Organization; 1970:98-99. 10. Simon JD. Biological terrorism: preparing to meet the threat. JAMA. 1997;278:428-430. MEDLINE 11. Cristy GA, Chester CV. Emergency Protection Against Aerosols. Oak Ridge, Tenn: Oak Ridge National Laboratory; 1981. Publication ORNL-5519. 12. Office of Technology Assessment, US Congress. Proliferation of Weapons of Mass Destruction. Washington, DC: US Government Printing Office; 1993:53-55. Publication OTA-ISC-559. 13. Kaufmann AF, Meltzer MI, Schmid GP. The economic impact of a bioterrorist attack. Emerg Infect Dis. 1997;3:83-94. MEDLINE 14. Kohout E, Sehat A, Ashraf M. Anthrax: a continuous problem in south west Iran. Am J Med Sci. 1964;247:565. 10 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale 15. Pienaar UV. Epidemiology of anthrax in wild animals and the control on anthrax epizootics in the Kruger National Park, South Africa. Fed Proc. 1967;26:1496-1591. MEDLINE 16. Dragon DC, Rennie RP. The ecology of anthrax spores. Can Vet J. 1995;36:295-301. MEDLINE 17. Titball RW, Turnbull PC, Hutson RA. The monitoring and detection of Bacillus anthracis in the environment. J Appl Bacteriol. 1991;70(suppl):9S-18S. 18. Brachman PS, Friedlander A. Anthrax. In: Plotkin SA, Orenstein WA, eds. Vaccines3rd ed. Philadelphia, Pa: WB Saunders Co; 1999:629-637. 19. Brachman PS. Inhalation anthrax. Ann N Y Acad Sci. 1980;353:83-93. MEDLINE 20. Centers for Disease Control and Prevention. Summary of notifiable diseases, 1945-1994. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 1994;43:70-78. 21. Myenye KS, Siziya S, Peterson D. Factors associated with human anthrax outbreak in the Chikupo and Ngandu villages of Murewa district in Mashonaland East Province, Zimbabwe. Cent Afr J Med. 1996;42:312-315. MEDLINE 22. Tekin A, Bulut N, Unal T. Acute abdomen due to anthrax. Br J Surg. 1997;84:813. MEDLINE 23. Friedlander A. Anthrax. In: Zajtchuk R, Bellamy RF, eds. Textbook of Military Medicine: Medical Aspects of Chemical and 11 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale Biological WarfareWashington, DC: Office of the Surgeon General, US Dept of the Army; 1997:467478. 24. Sirisanthana T, Nelson KE, Ezzell JW, Abshire TG. Serological studies of patients with cutaneous and oral-pharyngeal anthrax from northern Thailand. Am J Trop Med Hyg. 1988;39:575-581. MEDLINE 25. Kunanusont C, Limpakarnjanarat K, Foy HM. Outbreak of anthrax in Thailand. Ann Trop Med Parasitol. 1989;84:507-512. 26. Sirisanthana T, Navachareon N, Tharavichitkul P, Sirisanthana V, Brown AE. Outbreak of oral-pharyngeal anthrax. Am J Trop Med Hyg. 1984;33:144-150. MEDLINE 27. Dutz W, Saidi F, Kouhout E. Gastric anthrax with massive ascites. Gut. 1970;11:352-354. MEDLINE 28. Friedlander A, Welkos SL, Pitt ML, et al. Postexposure prophylaxis against experimental inhalation anthrax. J Infect Dis. 1993;167:1239-1242. MEDLINE 29. Lincoln RE, Hodges DR, Klein F, et al. Role of the lymphatics in the pathogenesis of anthrax. J Infect Dis. 1965;115:481-494. MEDLINE 30. Williams RP. Bacillus anthracis and other spore forming bacilli. In: Braude AI, Davis LE, Fierer J, eds. Infectious Disease and Medical Microbiology.Philadelphia, Pa: WB Saunders Co; 1986:270-278. 31. Druett HA, Henderson DW, Packman L, Peacock S. Studies on respiratory infection. J Hyg. 1953;51:359-371. 32. Hatch TF. 12 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale Distribution and deposition of inhaled particles in respiratory tract. Bacteriol Rev. 1961;25:237-240. 33. Ross JM. The pathogenesis of anthrax following the administration of spores by the respiratory route. J Pathol Bacteriol. 1957;73:485-495. 34. Glassman HN. Industrial inhalation anthrax. Bacteriol Rev. 1966;30:657-659. 35. Henderson DW, Peacock S, Belton FC. Observations on the prophylaxis of experimental pulmonary anthrax in the monkey. J Hyg. 1956;54:28-36. 36. Smith H, Keppie J. Observations on experimental anthrax. Nature. 1954;173:869-870. 37. Defense Intelligence Agency. Soviet Biological Warfare Threat. Washington, DC: US Dept of Defense; 1986. Publication DST-161OF-057-86. 38. Amramova FA, Grinberg LM, Yampolskaya O, Walker DH. Pathology of inhalational anthrax in 42 cases from the Sverdlovsk outbreak in 1979. Proc Natl Acad Sci U S A. 1993;90:2291-2294. MEDLINE 39. Dalldorf F, Kaufmann AF, Brachman PS. Woolsorters' disease. Arch Pathol. 1971;92:418-426. MEDLINE 40. Gleiser CA, Berdjis CC, Harman HA, Gochenour WS. Pathology of experimental respiratory anthrax in Macaca Mulatta. Br J Exp Pathol. 1963;44:416-426. 41. Franz DR, Jahrling PB, Friedlander A, et al. Clinical recognition and management of patients exposed to biological warfare agents. JAMA. 13 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale 1997;278:399-411. MEDLINE 42. Vessal K, Yeganehdoust J, Dutz W, Kohout E. Radiologic changes in inhalation anthrax. Clin Radiol. 1975;26:471-474. MEDLINE 43. Albrink WS, Brooks SM, Biron RE, Kopel M. Human inhalation anthrax. Am J Pathol. 1960;36:457-471. 44. Dahlgren CM, Buchanan LM, Decker HM, et al. Bacillus anthracis aerosols in goat hair processing mills. Am J Hyg. 1960;72:24-31. 45. Walker JS, Lincoln RE, Klein F. Pathophysiological and biochemical changes in anthrax. Fed Proc. 1967;26:1539-1544. MEDLINE 46. Pile JC, Malone JD, Eitzen EM, Friedlander A. Anthrax as a potential biological warfare agent. Arch Intern Med. 1998;158:429-434. MEDLINE 47. Institute of Medicine National Research Council. Improving Civilian Medical Response to Chemical and Biological Terrorist Incidents. Washington, DC: National Academy Press; 1998:1-70. 48. Centers for Disease Control and Prevention. Bioterrorism alleging use of anthrax and interim guidelines for management MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 1999;48:69-74. United States, 1998. MEDLINE 49. Penn C, Klotz SA. Anthrax. In: Gorbach SL, Bartlett JG, Blacklow NR, eds.Infectious DiseasesPhiladelphia, Pa: WB Saunders Co; 1998:1575-1578. 50. Brachman PS. Anthrax. 14 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale In: Hoeprich PD, Jordan MC, Ronald AR, eds. Infectious DiseasesPhiladelphia, Pa: JB Lippincott; 1994:1003-1008. 51. Anthrax vaccine, military use in Persian Gulf region [press release]. Washington, DC: US Dept of Defense; September 8, 1998. 52. Michigan Department of Public Health. Anthrax Vaccine Absorbed. Lansing: Michigan Dept of Public Health; 1978. 53. Brachman PS, Gold H, Plotkin SA, Fekety FR, Werrin M, Ingraham NR. Field evaluation of human anthrax vaccine. Am J Public Health. 1962;52:632-645. 54. Ivins BE, Fellows P, Pitt ML, et al. Efficacy of standard human anthrax vaccine against Bacillus anthracis aerosol spore challenge in rhesus monkeys. Salisbury Med Bull. 1996;87:125-126. 55. Turnbull PC. Anthrax vaccines: past, present and future. Vaccine. 1991;9:533-539. MEDLINE 56. Barnes JM. Penicillin and B anthracis. J Pathol Bacteriol. 1947;194:113-125. 57. Lincoln RE, Klein F, Walker JS, et al. Successful treatment of monkeys for septicemic anthrax. In: Antimicrobial Agents and Chemotherapy 1964Washington, DC: American Society for Microbiology; 1965:759-763. 58. Odendaal MW, Peterson PM, de Vos V, Botha AD. The antibiotic sensitivity patterns of Bacillus anthracis isolated from the Kruger National Park. Onderstepoort J Vet Res. 1991;58:17-19. MEDLINE 59. Doganay M, Aydin N. Antimicrobial susceptibility of Bacillus anthracis. Scand J Infect Dis. 1991;23:333-335. 60. American Hospital Formulary Service. 15 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale AHFS Drug Information. Bethesda, Md: American Society of Health System Pharmacists; 1996. 61. Kelly D, Chulay JD, Mikesell P, Friedlander A. Serum concentrations of penicillin, doxycycline, and ciprofloxacin during prolonged therapy in rhesus monkeys. J Infect Dis. 1992;166:1184-1187. MEDLINE 62. Stepanov AV, Marinin LI, Pomerantsev AP, Staritsin NA. Development of novel vaccines against anthrax in man. J Biotechnol. 1996;44:155-160. MEDLINE 63. Schaad UB, Abdus Salam M, Aujard Y, et al. Use of fluoroquinolones in pediatrics. Pediatr Infect Dis J. 1995;14:1-9. MEDLINE 64. Lightfoot NF, Scott RJ, Turnbull PC. Antimicrobial susceptibility ofBacillus anthracis: proceedings of the international workshop on anthrax. Salisbury Med Bull. 1990;68:95-98. 65. Perkins WA. Public health implications of airborne infection. Bacteriol Rev. 1961;25:347-355. 66. American Public Health Association. Anthrax. In: Benenson AS, ed. Control of Communicable Diseases ManualWashington, DC: American Public Health Association; 1995:18-22. 67. Morse S, McDade J. Recommendations for working with pathogenic bacteria. Methods Enzymol. 1994;235:1-26. MEDLINE 68. Guillermin J. Anthrax: The Investigation of a Lethal Outbreak. Berkeley: University of California Press. In press. 69. Chinn KS. Reaerosolization Hazard Assessment for Biological Agent-Contaminated Hardstand Areas. 16 S.I.M.G. Società Italiana di Medicina Generale Life Sciences Division, Dugway Proving Ground, Utah: US Dept of the Army; 1996:1-40. Publication DPG/JCP-96/012. 70. Resnick IG, Martin DD, Larsen LD. Evaluation of Need for Detection of Surface Biological Agent Contamination. Dugway Proving Ground, Life Sciences Division, US Dept of the Army; 1990:1-35. Publication DPGFR-90-711. 71. Manchee RJ, Stewart WD. The decontamination of Gruinard Island. Chem Br. July 1988;690-691. 72. US Army Medical Research Institute of Infectious Diseases, Centers for Disease Control and Prevention, and US Food and Drug Administration. Medical Response to Biological Warfare and Terrorism. Gaithersburg, Md: US Army Medical Research Institute of Infectious Diseases, Centers for Disease Control and Prevention, and US Food and Drug Administration; 1998. 73. Pomerantsev AP, Staritsin NA, Mockov YV, Marinin LI. Expression of cereolysine AB genes in Bacillus anthracis vaccine strain ensures protection against experimental hemolytic anthrax infection. Vaccine. 1997;15:1846-1850. MEDLINE 17