L’immunofenotipo leucocitario: utilità diagnostica Roberto Caporale Pistoia, 29 ottobre 2011 Bernard Shoor & Leonard Herzenberg at Stanford with one of the original BD Flow Cytometers 1974 - Becton & Dickson, using FACS technology, introduced 1st commercial Flow (FACS-1) Sistema FACSCanto II BD Biosciences Microscopia in fluorescenza Citometria Citometria a Flusso (CFM) La CFM consente l’analisi automatica di sospensioni cellulari monodisperse, misurandone le caratteristiche fisiche e/o biochimiche all’interno di un flusso laminare che interseca una sorgente di eccitazione FOCALIZZAZIONE IDRODINAMICA LASER sheath fluid campione Generazione dei segnali di “scatter” Rifrazione & Riflessione: proporzionale alla granularità cellulare e alla complessità rilevate a 90° rispetto la luce incidente. SSC GRANULOCITI MONOCITI FSC LINFOCITI Diffrazione: proporzionale alle dimensioni della cellula rilevata lungo l’asse della luce incidente 0° La combinazione dei due tipi di segnali permette di ottenere un particolare diagramma di dispersione denominato CITOGRAMMA nel quale si possono evidenziare fino a 5 o 6 differenti popolazioni cellulari, in base alle sole caratteristiche fisiche Sottopopolazioni leucocitarie in sangue periferico -Citogramma - COMPLESSITA’ EOSINOFILI NEUTROFILI MONOCITI LINFOCITI BASOFILI VOLUME Immunofenotipizzazione cellulare - definizione - Insieme di metodi diretti al riconoscimento, alla quantificazione ed alla localizzazione di strutture cellulari per mezzo di reagenti immunologici (anticorpi monoclonali). Pubblicazioni 123328 references (2010) 1st Crescita delle applicazioni diagnostiche in citometria a flusso Requisiti per una buona analisi citometrica • Esperienza dell’operatore • Valutazione delle prestazioni e della stabilità della strumentazione • Controlli di qualità (IQC, VEQ, EQAS) Riproducibilità dei parametri di fluorescenza Linfoma Follicolare - diagnosi Linfoma Follicolare - MMR Materiali idonei per indagini in CFM Liquidi: Solidi: •Sangue periferico •Linfonodi •Aspirati Midollari •Biopsie •Leucaferesi •Agoaspirati •Liquor •Liquidi cavitari Regole per una corretta analisi citometrica in onco-ematologia • • • • Quesito diagnostico (dialogo con i clinici) Caratteristiche del campione da analizzare Scelta di adeguate combinazioni di anticorpi monoclonali Regolazione dello strumento e “compensazione” delle fluorescenze • Strategie di “gating” per il riconoscimento delle popolazioni cellulari da analizzare • Integrazione con i laboratori di morfologia, citogenetica e biologia molecolare • Formulazione di una risposta adeguata e conclusiva Metodo di studio in citometria • Valutazione delle normali componenti cellulari del sangue midollare • Valutazione dello stadio maturativo di tali componenti • Dimostrazione della presenza nel campione anormali di cellule • Eventuale dimostrazione della loro clonalità • Evidenziazione di fenotipi peculiari allo scopo di identificare una determinata entità nosografica e/o utili per lasciare una traccia in corso di follow-up (MMR) Espressione del CD45 nei leucociti Sangue Periferico vs Sangue Midollare Sangue periferico Sangue midollare Maturazione Mieloide: SIDE SCATTER MATURAZIONE MIELOIDE: granulocitopoiesi stem cell CD34 CD13 CD33 CD66c CD66b CD11c CD11b CD11a CD16 CD64 CD15 Blasto mieloide promieloc ita Mielo cita Meta mielocita granulo cita MATURAZIONE MIELOIDE monocitopoiesi stem cell CD34 CD13 CD33 CD36 CD64 CD11b CD14 Blasto mieloide promonoc ita Mono cita MATURAZIONE MIELOIDE: variabili di espressione 100 CD13 CD11b CD16 CD10 0 PROMIELO MIELO METAMIELO CD64 GRAN Interpretazione su CD66b/CD11b Maturazione Mieloide Interpretazione su CD66b/CD11b BM normale Sindrome mielodisplastica + mature immature blasti blocco maturativo CD13 CD11b Maturazione mieloide in BM normale CD16 CD10 CD11b CD16 CD64 CD15 CD11b CD13 Maturazione mieloide in BM con MDS CD16 CD16 CD10 CD11b R4 CD64 CD15 Maturazione mieloide in BM con MDS Maturazione monocitaria in BM con LMMC Mean values of bone marrow leucocyte populations Cell count 34.5 x 106 cell/ml (SD 28.0) Erythroid 10.8% (SD 5.7) Lymphocytes 12.4% (SD 5.9) CD3 61.4% (SD 15.1) CD4 29.3% (SD 11.3) CD8 30.8% (SD 13.1) NK 11.2% (SD 9.2) CD19 18.9% (SD 14.0) CD19+10+ 43.10% (SD28.6) CD19+20+ 45% (SD28.9) Monocytes (CD14) 3.2% (SD 1.5) CD34+ cells 0.9% (SD 0.7) Whole myeloid serie 72.2% (SD 8.7) Immature/blast 3.6% (SD 2.1) Promyelocytes 12.3% (SD 6.3) Myelo and metamyelo 28.4% (SD 11.4) band and mature 48.9% (SD 15.5) Eosinophils 1.9% (SD 1.5) Plasmacells 0.4% (SD 0.3) A. Santagostino CD16 FITC/CD13 PE/CD34 PerCP-Cy5.5/ CD11b PE-Cy7/CD117 APC/CD45 APC-Cy7 Maturazione Mieloide: SIDE SCATTER NORMALE MDS MDS ABNORMALITIES BY FCM • Hypogranulation of PMN 84% • CD11b/CD16 abnormal 70% • CD13/CD16 abnormal 78% • CD64+ granulocytes 66% • CD10- granulocytes 11% • CD45-dim blasts 53% • CD56+ granulocytes 21% • CD56+ monocytes 33% • My-cells expressing non-My Ags 38% Stetler-Stevenson, Blood 2001 CD16 FITC/CD13 PE/CD34 PerCP-Cy5.5/ CD11b PE-Cy7/CD56 APC/CD45 APC-Cy7 PROFILO ANTIGENCO Maturazione linfoide B stem cell CD34 TdT CD79a CD19 CD10 CD20 CD22 cµ SmIg Cellula pre-pre B Cellula pre B nucleare citoplasmatico citoplasmatico Cellula B Maturazione linfoide B CD20 FITC/CD10 PE/CD34 PerCP-Cy5.5/ CD38 PE-Cy7/CD19 APC/CD45 APC-Cy7 Intensità di espressione nelle M. Linfoproliferative CD22 FITC/CD200 PE/ CD19 PerCP-Cy5.5 / CD5 PE-Cy7/ CD23 APC /CD45 APC-Cy7 MCL CLL Intensità di espressione nelle M. Linfoproliferative Kappa FITC/Lambda PE/ CD20 PerCP-Cy5.5 / CD38 PE-Cy7/ CD19 APC /CD45 APC-Cy7 MCL CLL Presenza o assenza di marcatori nelle M. Linfoproliferative MCL CLL Espressione di ZAP-70 nelle CLL VALUTAZIONE HCL CD103 FITC/CD11c PE/ CD20 PerCP-Cy5.5 / CD25 PE-Cy7/ CD19 APC /CD45 APC-Cy7 VALUTAZIONE T-LDGL CD57 FITC/CD5 PE/ CD3 PerCP-Cy5.5 / HLA-DR PE-Cy7/ CD8 APC /CD45 APC-Cy7 ANALISI BIVARIATA DELLA DISTRIBUZIONE DI CD158a E CD158b SULLE CELLULE NK pattern atteso in una popolazione policlonale CD158b CD158a ANALISI BIVARIATA DELLA DISTRIBUZIONE DI CD158a E CD158b SU CELLULE KIR+ pattern compatibili con l’ipotesi di clonalità CD158b CD158b CD158a CD158b CD158a CD158b CD158a CD158a ANALISI BIVARIATA DELLA DISTRIBUZIONE DI CD158a E CD158b SULLE CELLULE NK pattern atteso in una popolazione policlonale pattern compatibili con l’ipotesi di clonalità VALUTAZIONE PLASMACELLULE PARAMETRI INDAGATI CD19 CD138 CD38 CD56 FSC / SSC debole presente Brillante assente assente presente presente Ridotta IPOTESI DIAGNOSTICA ↑↑ ↑↑↑ plasmacellule normali plasmacellule trasformate Immunofenotipo plasmacellule normali Combinazione MoAb FITC PE PerCP-Cy5.5 PE-Cy7 APC APC-H7 HV-450 1 CD138 CD117 CD20 CD38 CD56 CD45 CD19 Immunofenotipo plasmacellule trasformate Combinazione MoAb FITC PE PerCP-Cy5.5 PE-Cy7 APC APC-H7 HV-450 1 CD138 CD117 CD20 CD38 CD56 CD45 CD19 Immunofenotipo plasmacellule trasformate • CD19-CD56• CD19-CD56+ Plasma cells: normal vs clonal Normal & reactive MGUS CD38 +++ CD138 ++ k&l (polyclonal) Myeloma CD38 +++/++ CD138 ++ CD38 ++ CD138 ++ k &/or l CD56-/+ (monoclonal in a proportion of CD19-/+ PCs) CD20- CD56CD19+ CD20CD45+ CD117- k or l (monoclonal) CD19CD20- CD45+/CD117- CD38 +++ CD138 ++ k&l CD56- (polyclonal) CD19+ CD20CD45+ CD117- CD56++ CD45CD117-/+ CD38 ++ CD138 ++ k or l (monoclonal) CD56++ CD19- CD20CD45CD117-/+ Clonal Ocqueteau et al, AJP 152,1655,1998 MM: dimostrazione di monoclonalità Immunofenotipi plasmacellulari IF1 IF2 % PC=15% IF3 % PC=19% IF4 % PC=5% IF1 IF2 IF3 IF4 CD19 + + - - CD56 - - + - % PC <0.4 >0.4 NS NS 62% 70% 60% 50% 40% 30% 20% 10% 0% 21% 12% 5% IF1 IF2 IF3 IF4 fattori prognostici in CFM CD45 CD20 CD117 CD56 CD38 IF1 IF2 IF3 IF4 TOT IF CD20+ / CD38dim / CD5618 3 13 2 CD45/ 3 5 2 12 CD117+ / 1 31 10 9 2 11 15 10 33 42 Nuovi targets per la terapia contro il MM Presenza di PC-MM su Sangue periferico: SANGUE MIDOLLARE MM SANGUE PERIFERICO MM SANGUE PERIFERICO NORMALE Malattia Minima Residua A DIAGNOSI B MMR Sensibilità strumentale = 1/10000 Conclusioni (I) Utilità della citofluorimetria nel paziente affetto da MM: • distingue tra plasmacellule normali, reattive e patologiche • determina eventuali fattori prognostici • identificare nuovi targets per la terapia contro il mieloma • un’elevata sensibilità nel valutare la MMR • possibilità di evidenziare PC-MM anche su sangue periferico Conclusioni (II) • L’analisi multiparametrica multicolore consente una maggiore opportunità di discriminare sottopopolazioni cellulari. • E’ necessario applicare buone procedure di validazione strumentale e ottimizzare la scelta delle combinazioni dei reagenti. • L’elettronica digitale ha decisamente aiutato nella esecuzione di analisi complesse fino a poco tempo fa impensabili.