ENZIMI DI RESTRIZIONE Reazione ligasica di frammenti di restrizione DNA RICOMBINANTE: DUE MOLECOLE DI DNA VENGONO UNITE IN PROVETTA SFRUTTANDO LE PROPRIETA’ DI ENDONUCLEASI DI RESTRIZIONE DI TIPO II E DELLA DNA LIGASI CLONAGGIO -IN BIOLOGIA CLONARE UN ORGANISMO SIGNIFICA OTTENERE UN INDIVIDUO UNA POPOLAZIONE DI ORGANISMI CHE SONO GENETICAMENTE IDENTICI -IN BIOLOGIA MOLECOLARE CLONARE UN TRATTO DI DNA SIGNIFICA OTTENERE UNA POPOLAZIONE DI DNA IDENTICHE ALLA MOLECOLA DI PARTENZA Fig 4.20 separation of poly-A mRNA mRNA Purification 1. Total RNA Purification 2. PolyA+ RNA purification using oligo(dT) Gubler Hoffman cDNA Synthesis - 1 mRNA primed mRNA AAAAAn Anneal oligo dT primer AAAAAn TTTTT Reverse Transcriptase and dNTPs mRNA/cDNA hybrid AAAAAn TTTTT Gubler Hoffman cDNA Synthesis - 2 mRNA/cDNA hybrid AAAAAn TTTTT RNase H nicked RNA AAAAAn TTTTT DNA Pol I nicked RNA used as primers by Pol AAAAA TTTTT Gubler Hoffman cDNA Synthesis - 3 2nd strand cDNA in pieces AAAAA TTTTT E. coli DNA Ligase AAAAA TTTTT ds cDNA Clone into vector cDNA Library cDNA synthesis TTTTTTTTT First strand Nick translation cDNA library Vettori e clonaggio Vettori Plasmidi Fagi Cosmidi YAC Vettori e clonaggio Plasmide Molecola circolare di DNA a doppio filamento, normalmente presente nella cellula batterica, in grado di replicarsi autonomamente dal cromosoma. VETTORI DI CLONAGGIO Vettori e clonaggio Replicazione di un plasmide INSERIMENTO DI UN TRATTO DI DNA ESOGENO IN UN VETTORE DI CLONAGGIO CLONAGGIO: -TRASFORMAZIONE -SELEZIONE -CRESCITA COLONIE IDENTIFICAZIONE DELLA COLONIA BATTERICA DI INTERESSE Bromo-chloro-indoyl--galactopyranosidase or X-Gal (Clear) -galactosidase Bromo-chloro-indoyl (Deep blue insoluble) + galactose Inserting chromosomal DNA into a vector Chromosome GAATTC CTTAAG Vector GAATTC CTTAAG GAATTC CTTAAG Cut with EcoRI and add DNA ligase Recombinant vector GAATTC CTTAAG GAATTC CTTAAG Ampicillin resistant; -galactosidase negative (White on X-Gal) LacZ gene codes for -galactosidase Ampicillin resistance gene Bacteria from ligation plated on ampicillin and X-Gal Contains wild type plasmd Contains recombinant plasmd Vettori e clonaggio Vettori e clonaggio Lunghezza massima del DNA clonabile in un plasmide: circa 20 Kb Amino acid sequence Met-Asn-Lys-Trp-Glu-Met Met = ATG; Asn = AAT or AAC; Lys = AAA or AAG; Trp = TGG; Glu = GAA or GAG How many probes must we make? ATG AAT AAA TGG GAA ATG ATG AAT AAA TGG GAG ATG ATG AAT AAG TGG GAA ATG ATG AAT AAG TGG GAG ATG ATG AAC AAA TGG GAA ATG ATG AAC AAA TGG GAG ATG ATG AAC AAG TGG GAA ATG ATG AAC AAG TGG GAG ATG Screening the Library ATTAGCGCCTTTACGCA ……………………TAATCGCGGAAATGCGT………… Il metodo Sanger (o metodo a terminazione di catena) 1) Il sequenziamento a terminazione di catena coinvolge la sintesi di nuovi filamenti di DNA, complementari ad uno stampo a singolo filamento Per la sintesi del DNA si utilizzano DNA polimerasi caratterizzate da •Elevata processività •Bassa attività esonucleasica 5’-3’ •Bassa attività esonucleasica 3’-5’ (es. Klenow, Sequenasi) (1) Produzione dello stampo a filamento singolo Utilizzo della PCR Utilizzo di un fago helper Per M13 e produzione della Forma a singolo filamento Utilizzo di fagemidi Denaturazione del vettore Il metodo Sanger (o metodo a terminazione di catena) Nel sequenziamento a terminazione di catena la reazione oltre ad 1) Uno stampo a singola elica ha bisogno di: 2) un innesco specifico (primer) 3) La marcatura con un dNTP* marcato, di solito con 35S (2,3) Sintesi del filamento marcato PRIMER DNA Polimerasi 5’-A T C T T T T A G A GT A C C 3’-T A G A A A A T C T C A T G G A C T C T C T A C T A T C T A C A T G T A -5’ PRIMER 5’-A T C T T T T A G A GT A C C T G AG*AGAT GA T AG*A DNA Polimerasi 3’-T A G A A A A T C T C A T G G A C T C T C T A C T A T C T A C A T G T A -5’ Il metodo Sanger (o metodo a terminazione di catena) Nel sequenziamento a terminazione di catena la reazione oltre ad 1) Uno stampo a singola elica 2) un innesco specifico (primer) 3) La marcatura con un dNTP* marcato, di solito con 35S ha bisogno di: 4) una miscela di ddNTP, uno per ogni reazione di sequenza Terminazione della catena La sintesi del filamento compementare, tuttavia non prosegue indefinitivamente, perché la miscela di reazione contiene, in quattro distinte reazioni piccole quantità di specifici dideossinucleotidi trifosfati, ddATP, ddTTP, ddCTP e ddGTP, che bloccano l’allungamento perché posseggono un solo atomo di idrogeno al posto del gruppo -OH in 3’ PRIMER 5’-A T C T T T T A G A GT A C C T G AG*AGAT GA T AG*A DNA Polimerasi 3’-T A G A A A A T C T C A T G G A C T C T C T A C T A T C T A C A T G T A -5’ + ddNTP ( per es. ddCTP) STOP 5’-A T C T T T T A G A GT A C C T G AG*AGAT GA T AG*AT G T AddC 3’-T A G A A A A T C T C A T G G A C T C T C T A C T A T C T A C A T G T A -5’ Il risultato è una serie di frammenti interrotti ciascuno in corrispondenza di ogni dCTP ddCTP ddCTP ddCTP ddCTP ddCTP ddCTP Schema di sequenziamento a terminazione di catena DNA stampo a singola elica 3’-GGCTAAC 5’ Ibridazione con Il primer 3’ 3’-GGCTAAC + [35S]dATP+dCTP,dGTP,dTT (dNTP) +Sequenasi ddATP, dNTP ddCTP, dNTP -CCG ddA -ddC -C ddC A C ddGTP, dNTP ddTTP, dNTP -CC ddG -CCGATT ddG G -CCGA ddT -CCGAT ddT T -CCGATT ddG -CCGAT ddT -CCGA ddT -CCG ddA -CC ddG -C ddC -ddC G T T A G C C Sequenza: 5’-CCGATTG Direzione di lettura Nuovi metodi di sequenziamento Il sequenziamento a ciclo termico ( PCR asimmetrica) Il sequenziamento automatizzato con marcatori fluorescenti Il sequenziamento a ciclo termico ( PCR asimettrica) DNA stampo PCR con un solo primer ddATP ddA ddA ddA ddA ddA Vengono effettuate 4 rezioni di PCR, ognuna contiene un solo primer e uno dei 4 dideossi nucleotidi trifosfati. Si generano le consuete famiglie di filamenti a catena terminata che vengono risolti per elettroforesi su gel di poliacrilammide Il sequenziamento automatizzato con marcatori fluorescenti Coniugando a ciascun ddNTP un diverso marcatore fluorescente, è possibile effettuare le quattro reazioni di sequenziamento in un unico tubo da saggio e caricare il tutto in solo pozzetto di gel ddA ddT ddC ddG Le emissioni fluorescenti vengono captate da un rilevatore e le informazioni vengono integrate e trasformate in picchi di colore diverso, con aree proporzionali all’intensità di emissione. Fluorescent DNA Sequencing AGTAC T G G GAT C Gel Electrophoresis Detection of Fluorescently Tagged DNA DNA Fragments Separated by Electrophoresis Optical Detection System Scanning Laser Excites Fluorescent Dyes Output to Computer Fluorescent DNA Sequencing Data Fluorescent DNA Sequence Trace