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CONSERVAZIONE CAMPIONI
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EMOCOLTURE
risposte in 5-7 giorni
Materiale per la raccolta
Aghi e siringhe monouso / sistema vacutainer.
Flaconi appositi contenenti brodo di coltura (conservare prima dell’uso a temperatura
ambiente):
BACTEC per batteri aerobi
BACTEC per batteri anaerobi
Modalità di prelievo
1. Sgrassare la cute con clorexidina 5% in soluzione alcoolica
2. Disinfettare la cute lasciando nella sede del prelievo un impacco con clorexidina 5%
in soluzione alcoolica per 2 minuti
3. Rimuovere l’eccesso di disinfettante, pulendo dal centro alla periferia
4. Predisporre i flaconi a) e b) precedentemente identificati con il nome del paziente e
del reparto per ciascun prelievo
5. Effettuare il prelievo senza toccare con le dita la zona disinfettata (se necessario
munirsi di guanti sterili o disinfettare accuratamente il dito che palpa).
6. Rimuovere il cappuccio dei flaconi Bactec, decontaminare il tappo con disinfettante,
introdurre direttamente i flaconi BACTEC nella camicia del sistema
VACUTAINER.
7. Tenere i flaconi verticali per controllare la quantità di sangue aspirato, che deve
essere di circa 5-8 ml ed, in ogni caso, non superare il segno nero posto al margine
superiore dell’etichetta sul flacone
8. Se si usa una siringa sterile raccogliere 5-8 ml di sangue e immetterlo in ciascun
flacone evitando di introdurre aria.
9. Per i bambini possono essere prelevati meno di 5 ml di sangue da inoculare. Per i
neonati si raccomanda un volume di 1-2 mL a flacone
10.Non attaccare cerotti, cotone od altro sul tappo del flacone
11.Non scrivere e non attaccare cerotti, etichette o altri adesivi sul codice a barre del
flacone
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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Conservazione
Inviare al laboratorio di Microbiologia dalle ore 7.30 alle ore 19.30 dei giorni feriali.
Conservare a temperatura ambiente sino al momento della consegna in laboratorio.
Note
I campioni vengono incubati di regola per un periodo da 5 a 7 giorni. In casi particolari
ed in base alle informazioni fornite con il modulo di richiesta, il tempo d’osservazione
può essere protratto, ad esempio in caso di infezioni da Brucella spp. e miceti, il cui
sospetto deve essere obbligatoriamente segnalato sul modulo di richiesta.
Non esistono protocolli univoci per quanto attiene al momento ed al numero di prelievi
da effettuare per una corretta diagnosi di batteriemia / sepsi.
Se il paziente non è sotto trattamento antibiotico è consigliabile eseguire tre prelievi a
distanza di 15-30 minuti, preferibilmente al rialzo febbrile. Un secondo ed un terzo set
di colture non solo incrementano la possibilità di isolamento, ma consentono anche il
rilievo di contaminazioni. In corso di terapia antibiotica è consigliabile eseguire i
prelievi prima della somministrazione dell’antibiotico, quando il livello ematico del
farmaco presumibilmente è più basso.
Il volume di sangue posto in coltura rappresenta l’elemento più critico nel rilevamento
di una infezione del torrente circolatorio. Il numero di microrganismi presenti in corso
di batteriemia dell’adulto è frequentemente <1000 UFC/L. Esiste una relazione diretta
fra volume di sangue e positività. Generalmente si raccomanda la semina di 20-30 mL
di sangue, suddivisi in 3-4 flaconi per aerobi e 3-4 flaconi per anaerobi, da effettuarsi
sia in un solo tempo che in tempi successivi nell’arco di un’ora.
Segnalare sempre per iscritto una sospetta batteriemia da brucella, da germi
difficili o altra etiologia batterica rara, nonchè la coltura per miceti, poichè il
tempo di incubazione dei flaconi deve essere prolungato sino a 10-14 giorni.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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EMOCOLTURA in caso di batteriemia/sepsi CVC correlata
Materiale per la raccolta:
Aghi e siringhe monouso o sistema vacutainer.
Flaconi appositi contenenti brodo di coltura (conservare prima dell’uso a temperatura
ambiente):
BACTEC per batteri aerobi
BACTEC per batteri anaerobi
Modalità di prelievo
Eseguire i prelievi per emocoltura sia da VP (vena periferica) che da CVC (catetere
venoso centrale) in rapida succesione temporale:
1. Sgrassare la cute con clorexidina 5% in soluzione alcoolica
2. Disinfettare la cute lasciando nella sede del prelievo un impacco con clorexidina
5% in soluzione alcoolica per 2 minuti
3. Rimuovere l’eccesso di disinfettante, pulendo dal centro alla periferia
4. Effettuare il prelievo senza toccare con le dita la zona disinfettata (se necessario
munirsi di guanti sterili o disinfettare accuratamente il dito che palpa
5. Far defluire da 5 a 8 ml di sangue nei flaconi per emocoltura, uno per aerobi (da
eseguire per prima) ed uno per anaerobi
6. Dal raccordo del Catetere Venoso Centrale, dopo decontaminazione del sito di
raccordo, scartare i primi 3-4 ml di sangue utilizzando una provetta per prelievo
di sangue tappo giallo, quindi far defluire il sangue come da VP nei due flaconi,
uno per aerobi (da eseguire per primo) ed uno per anaerobi
7. Etichettare correttamente i due flaconi, evitando di scrivere nella zona riservata
al codice a barre ed inviare immediatamente in laboratorio
8. Dopo circa un’ora ripetere il prelievo solo da VP
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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Conservazione
Inviare i flaconi entro 1 ora dal prelievo al laboratorio di Microbiologia (dalle ore 7.30
alle ore 19.30).
Per i prelievi eseguiti durate il turno notturno e festivo conservare i flaconi a
temperatura ambiente ed inviarli in laboratorio entro le ore 8,00 del mattino successivo
Note
La conferma che il catetere rappresenti la sorgente di un’infezione nelle batteriemie o
fungiemie correlate a catetere endovenoso (CVC) è spesso difficile.
La diagnosi di batteriemia correlata a catetere di solito deve tener conto di:
Isolamento dello stesso microrganismo dal sangue e dall’inserzione del CV o
dalla punta del CV
Una crescita significativamente più rapida dal flacone prelevato da CV rispetto a
quello da VP
Sepsi clinica, non rispondente alla terapia antimicrobica, che si risolve con la
rimozione del catetere
La positività solo da CV non è conclusiva per batteriemia CVC-correlata,
probabilmente trattasi di colonizzazione del catetere
Si suggerisce di richiedere i marcatori di sepsi per affinare la diagnosi:
- procalcitonina (provetta da emocromo da inviare al laboratorio di Microbiologia),
- Proteina C-reattiva (provetta tappo giallo da inviare al laboratorio di Biochimica).
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
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CATETERE VENOSO CENTRALE (CVC)
risposta colturale 3 – 7 giorni
Materiale per la raccolta
-
provette di plastica sterili
pinze sterili
forbici sterili
materiali per la predisposizione di “campo sterile”
Modalità di prelievo:
1. Effettuare la raccolta in campo sterile
2. Detergere la cute pericatetere con un tampone imbevuto di clorexidina 5% in
soluzione alcoolica
3. Rimuovere il catetere con le pinze, evitando il contatto con superfici non sterili;
4. Tagliare con forbici sterili la punta del catetere per una lunghezza di 3-5 cm;
5. Porre la punta in una provetta di plastica sterile vuota ed inviarla subito al
laboratorio di Microbiologia
N.B. seguire la stessa procedura per un tratto di catetere del tunnel e del sito di inserzione
ove necessario.
Conservazione
Inviare i campioni subito al laboratorio di Microbiologia (dalle ore 7.30 alle ore19.30) o
conservare a temperatura ambiente durante i turni notturni e festivi, dopo avere aggiunto 5
ml di soluzione fisiologica secondo le seguenti modalità:
- disinfettare il tappo del flacone di soluzione fisiologica (SF) con clorexidina
- lasciare agire il disinfettante per 2-3 minuti
- prelevare con siringa sterile 5 ml di soluzione fisiologica sterile
- trasferire la SF nella provetta e richiudere immediatamente
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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SECREZIONE da sito inserzione CVC.
Risposta colturale 2 –6 giorni
Materiale per la raccolta
-
tampone provvisto di terreno di trasporto
ago bottonuto / agocannula
provetta tappo azzurro (coagulazione)
Modalità di prelievo
 in caso di infiammazione di grado 1,2,3:
1.
2.
3.
4.
eseguire il lavaggio delle mani ed indossare guanti sterili
detergere con un disinfettante la cute intorno al sito di inserzione del CVC
allontanare il disinfettante con tamponi bagnati con soluzione fisiologica sterile:
raccogliere tramite tampone la secrezione che fuoriesce dal sito di inserzione,
favorita da lieve pressione utilizzando garza sterile:
5. riposizionare il tampone nell’apposita custodia munita di terreno di trasporto al
fine di evitare l’essiccamento,
 in caso di evidente raccolta siero-purulenta
1. aspirare la secrezione tramite agocannula o ago bottonuto e inviare in laboratorio
entro un’ora in provetta sterile tappo azzurro (provetta citratata)
Conservazione
Inviare il campione al laboratorio di Microbiologia entro una ora dal prelievo dalle ore
7.30 alle ore 19.30
Durante il turno festivo e notturno inviare al Laboratorio di Biochimica Clinica.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
LIQUOR
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CEFALORACHIDIANO
risposta colturale in 2 – 9 giorni
Materiale per la raccolta
Provette sterili tappo beige (cod. 364915)
Aghi e siringhe sterili
Modalità di prelievo del liquor da puntura lombare
1. Eseguire il lavaggio delle mani ed indossare guanti sterili.
2. Sgrassare la cute con alcool etilico 70% o etere.
3. Disinfettare la cute lasciando nella sede del prelievo impacco di disinfettante con
clorexidina 5% in soluzione alcoolica per 2 minuti
4. Rimuovere l’eccesso di disinfettante con alcool, pulendo dal centro alla periferia.
5. Suddividere il liquor in due o preferibilmente in tre provette sterili tappo beige,
quantità ottimale totale da prelevare non inferiore a 4 ml
6. La provetta per l’esame chimico fisico e conta cellule va inviata al laboratorio di
Biochimica (Palazzina A)
7. Le altre provette per esami microbiologici, contenenti almeno 2 ml di liquor
ciascuna, vanno inviate al laboratorio di Microbiologia
8. Se la quantità totale raccolta non supera i 2 ml, il campione non va suddiviso ed è
necessario consultare il microbiologo sulle priorità analitiche, in modo da avviare
in prima istanza le indagini microbiologiche e successivamente sullo stesso
campione le altre indagini.
In caso di richieste di ricerche virali o di Micobatteri (BK) occorre prelevare una
ulteriore provetta sterile con almeno 2 mL di liquor
Conservazione
Inviare il prelievo per esame microbiologici al laboratorio di Microbiologia dalle ore
7.30 alle ore 19.30. Durante il turno festivo e notturno inviare il campione al
laboratorio di Biochimica. La provetta di liquor per ricerche virali deve essere
conservata a –20°
Note
La ricerca di CRIPTOCOCCO verrà eseguita solo su indicazione clinica in pazienti
immunodepressi,
Corredare la richiesta di essenziali notizie cliniche e specificare la ricerca di particolari
microrganismi.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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LIQUIDI CAVITARI (PLEURICO, PERICARDICO, ASCITICO,
SINOVIALE …) – RACCOLTE ASCESSUALI CHIUSE
risposta colturale in 2 – 9 giorni
Materiale per la raccolta
set di prelievo per agoaspirato
provette sterili con citrato di sodio (provetta tappo celeste per gli esami di
coagulazione)
Modalità di prelievo
La tecnica di prelievo avviene per puntura diretta ed agoaspirazione in asepsi:
1. Eseguire il lavaggio delle mani ed indossare guanti sterili
2. Sgrassare la cute con alcool etilico 70%
3. Disinfettare la cute lasciando nella sede del prelievo un impacco disinfettante
con clorexidina 5% in soluzione alcoolica per 2 minuti
4. Rimuovere l’eccesso di disinfettante con alcool, pulendo dal centro alla
periferia
5. Raccogliere per agoaspirazione circa 5-8 ml di liquido
6. Porre in asepsi il campione in una o più provette sterili con sodio citrato
7. Capovolgere più volte la provetta per non consentire la coagulazione delle
proteine presenti
Conservazione
Inviare il campione al laboratorio di Microbiologia entro una ora dal prelievo
dalle ore 7.30 alle ore 19.30
Durante il turno festivo e notturno inviare al Laboratorio di Biochimica.
Nota
Specificare la ricerca di microrganismi particolari
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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LIQUIDI E RACCOLTE ASCESSUALI DA DRENAGGIO
risposta colturale in 2 – 9 giorni
Materiale per la raccolta
set di prelievo per agoaspirato
provette sterili con citrato di sodio (provetta tappo celeste per gli esami di
coagulazione)
Modalità di prelievo
Anche in presenza di sistemi chiusi, dopo accurato lavaggio delle mani ed aver
indossato guanti sterili:
1) detergere con un disinfettante (es. clorexidina ) la superficie esterna del tubo di
drenaggio poco al di sotto del punto di fuoriuscita dalla cute
2) con ago e siringa sterile aspirare una piccola quantità di liquido (circa 5 ml)
3) porre in asepsi il campione in un contenitore sterile con tappo a vite o
preferibilmente in una o più provette sterili con sodio citrato (tappo celeste).
4) Capovolgere più volte le provette per evitare la coagulazione del campione.
Conservazione
Inviare il campione al laboratorio di Microbiologia entro una ora dal prelievo dalle ore
7.30 alle ore 19.30.
Durante il turno festivo e notturno inviare al Laboratorio di Biochimica.
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CONSERVAZIONE CAMPIONI
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SECREZIONE DI FERITA, FISTOLA ecc.
Risposte colturale 2 –4 giorni
Materiale per la raccolta
Raccolta attraverso aspirazione con agocannula:
vedi istruzioni come per liquidi cavitari e raccolte ascesuali
Raccolta tramite tampone:
tampone provvisto di terreno di trasporto
Modalità di prelievo
1. eseguire il lavaggio delle mani ed indossare guanti sterili
2. detergere con un disinfettante la cute intorno al sito di prelievo ed i margini
esterni della ferita
3. allontanare il disinfettante con tamponi bagnati con soluzione fisiologica sterile
4. divaricare i lembi della ferita e raccogliere la secrezione secondo le modalità
descritte:
tramite aspirazione con agocannula o ago bottonuto, proseguire come per i
liquidi cavitari
tramite tampone e proseguire come segue:
sigillare il tampone nell’apposita custodia munita di terreno di trasporto al fine di
evitare l’essiccamento,
Conservazione
Inviare il campione al laboratorio di Microbiologia entro una ora dal prelievo, non
essendo attualmente disponibili idonei sistemi di conservazione e trasporto per batteri
anaerobi, dalle ore 7.30 alle ore 19.30
Durante il turno festivo e notturno inviare al Laboratorio di Biochimica.
Note
La ricerca di microrganismi particolari (micobatteri, o altro …) deve essere specificata
nel modulo di richiesta.
La raccolta tramite tampone non è idonea per la ricerca di Micobatteri
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LESIONE DA PRESSIONE
Risposte colturale 4 –6 giorni
Materiale per il prelievo
prelievo per aspirazione con agocannula o ago bottonuto: utilizzare per la
raccolta provette sterili con citrato di sodio e tappo estraibile (provetta per gli
esami di coagulazione)
prelievo tramite tampone provvisto di terreno di trasporto
Modalità di prelievo
1. eseguire il lavaggio delle mani ed indossare guanti sterili
2. detergere la ferita ed i margini esterni della ferita con soluzione sterile di
clorexedina
3. allontanare il disinfettante lavando la ferita con soluzione fisiologica sterile
4. divaricare i lembi della ferita e raccogliere la secrezione secondo le modalità
descritte di seguito:
tramite aspirazione con agocannula o ago bottonuto: raccogliere la secrezione
(almeno 1 ml) nella provetta indicata
tramite tampone: dopo il prelievo porlo nell’apposita custodia munita di terreno
di trasporto al fine di evitare l’essiccamento
Conservazione
Inviare il campione al laboratorio di Microbiologia entro una ora dal prelievo, non
essendo attualmente disponibili idonei sistemi di conservazione e trasporto per batteri
anaerobi, dalle ore 7.30 alle ore 19.30.
Note
I prelievi per l’esame colturale sono suggeriti dallo STADIO 3 delle lesioni da
pressione secondo il codice NPUAP
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PEZZI BIOPTICI, PROTESI
risposte colturali 3 – 7 giorni (test 700)
Materiale per la raccolta
Contenitore sterile di plastica a bocca larga e con tappo a vite.
Modalità di prelievo
Prelevare il materiale in asepsi ed introdurlo nel contenitore indicato
Conservazione
Inviare il campione al laboratorio di Microbiologia entro una ora dal prelievo dalle ore
7.30 alle ore 19.30
Durante il turno festivo e notturno inviare al Laboratorio di Biochimica.
Note
La ricerca di microrganismi particolari deve essere specificata nel modulo di richiesta.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
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RICERCA COLTURALE HELICOBACTER PYLORI
su MATERIALE BIOPTICO in corso di gastroscopia
Materiale per la raccolta
Contenitore sterile di plastica a bocca larga e con tappo a vite
Modalità di prelievo
Prima di procedere al prelievo è necessario avvisare il Laboratorio di Microbiologia
In corso di gastroscopia:
1. Aggiungere al contenitore indicato 10ml di soluzione fisiologica sterile
2. Prelevare i campioni bioptici da antro, fondo e corpo gastrico
3. Con pinze sterili porre i prelievi nel contenitore indicato, contenente 10ml di soluzione
fisiologica sterile, senza immergere le pinze
4. Assicurarsi che i frammenti bioptici siano completamente immersi nella soluzione
fisiologica
5. Richiudere accuratamente il contenitore
6. Etichettare correttamente con il nome del paziente
Conservazione e Trasporto
Inviare immediatamente al laboratorio di Microbiologia entro le ore 14.00
Note
Non conformità:
I frammenti bioptici che non risultino immersi nella soluzione fisiologica di trasporto non
verranno processati.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
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URINOCOLTURA (da mitto intermedio)
Esame colturale per germi comuni ed eventuale antibiogramma
risposta colturale 3 – 5 giorni
Materiale per la raccolta
Contenitore sterile di plastica, a bocca larga e con tappo a vite.
Provetta sterile di plastica da 10ml con tappo beige
Modalità di prelievo
1. Raccogliere le urine del mattino (o almeno 3 ore dopo l’ultima minzione)
procedendo come segue:
2. Lavare accuratamente le mani con acqua e sapone,
3. Pulire accuratamente i genitali esterni con acqua e sapone (nel maschio: dopo
avere retratto completamente la cute del glande; nella donna: tenendo distanziate
le grandi labbra con una mano, pulire con l’altra dall’avanti all’indietro),
4. Risciacquare con acqua corrente,
5. Urinare (nella donna tenendo divaricate le labbra) scartando il primo getto e,
senza interrompere la minzione, raccogliere direttamente nel contenitore il mitto
intermedio,
6. Riempire non oltre la metà il contenitore avendo l’avvertenza di non
contaminare, con le mani o i genitali, i bordi, l’interno,
7. Richiudere il contenitore.
URINE per Micobatteri
Materiale per la raccolta: Contenitore sterile di plastica con tappo a vite
Modalità di prelievo: vedi come per urinocoltura. La raccolta può essere ripetuta per
tre giorni successivi o alterni.
Quantità: almeno 30 ml
Ricerca diretta
Ricerca colturale
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URINOCOLTURA per neonati e lattanti
Esame colturale per germi comuni ed eventuale antibiogramma
risposta colturale 3 – 5 giorni
Materiale per la raccolta
Sacchetto di plastica adesivo, sterile.
Modalità di prelievo
1. Detergere accuratamente la regione sovra pubica, perianale ed i genitali esterni
con soluzione saponosa, risciacquare accuratamente e asciugare.
2. Applicare il sacchetto, facendolo aderire al perineo ed alla regione sovrapubica.
3. Non lasciare “in situ” per più di 30 minuti
4. Appena avvenuta la minzione rimuovere il sacchetto, chiuderlo accuratamente ed
introdurlo in un contenitore sterile da inviare al laboratorio di Microbiologia.
5. Se dopo 30 minuti non è avvenuta la minzione, applicare un nuovo sacchetto e
procedere come a i punti 1-2-3-4.
Note
Data la facile contaminazione del campione, dovuta alle particolari modalità di
raccolta, si consiglia di richiedere sempre contemporaneamente l’esame urine per
verificare la leucocituria.
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URINE DA CATETERE (circuito chiuso)
colturale per germi comuni ed eventuale antibiogramma
risposta colturale 3 – 5 giorni
Materiale per la raccolta
Contenitore sterile di plastica a bocca larga con tappo a vite.
Provetta sterile di plastica da 10ml con tappo beige, codice 364915
Siringa sterile monouso.
Modalità di prelievo
1. Chiudere il catetere con una pinza appena al di sotto del raccordo con la sacca, per il
tempo sufficiente a riempire il tratto di catetere al di sopra del raccordo (non oltre
un’ora).
2. Decontaminare con il disinfettante in dotazione la superficie della valvola, aspirare
con siringa sterile alcuni ml di urina (circa 5-10 ml ) ed immetterli nell’apposito
contenitore
3. Non raccogliere l’urina dalla sacca o sconnettendo il catetere.
Conservazione
Inviare subito al Laboratorio di Microbiologia, durante i turni notturni e festivi al
Laboratorio Biochimica.
Non congelare
Note
Per la ricerca di Micobatteri raccogliere 30-50ml di urine nel contenitore da 50ml tappo
a vite, la raccolta può essere ripetuta per tre giorni consecutivi.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
URINE per ricerca antigeni batterici di:
1. Legionella pneumophila
2. Streptococcus pneumoniae
Materiale per la raccolta
Contenitore sterile di plastica, a bocca larga e con tappo a vite.
Provetta sterile di plastica da 10ml con tappo beige
Quantità: 5-10ml
Risposta in 24 ore
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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COPROCOLTURA
per Salmonella, Shigella, Campylobacter
per E. coli patogeni
per Yersinia
per Campylobacter
per Salmonella
risposta colturale 3 – 5 giorni
Materiale per la raccolta
Contenitore in plastica sterile, provvisto di eventuale “cucchiaino”.
Modalità di prelievo
Feci:
Raccogliere una piccola quantità di feci nel contenitore pari al volume di una
nocciola, in ogni caso le feci non devono superare 1/3 del volume del
contenitore
Per feci liquide è sufficiente un volume di 2-3 ml
Non contaminare la superficie esterna ed il tappo del contenitore
Inviare al laboratorio di Microbiologia al più presto senza conservazione in
frigorifero
.
N.B.
1. il tampone rettale deve essere riservato solo alla ricerca di Salmonella a fini
epidemiologici.
2. Specificare l’esame colturale da eseguire, altrimenti sul campione verrà
eseguita solo la ricerca di Salmonella spp
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CONSERVAZIONE CAMPIONI
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Pag. 19 di 39
FECI per ricerca:
Antigeni di Rotavirus ed Adenovirus
Tossina A e B di Clostridium difficile
risposta 1 – 2 giorni
Materiale per la raccolta
Contenitore in plastica sterile, provvisto di eventuale “cucchiaino”.
Modalità di prelievo
Feci:
Raccogliere una piccola quantità di feci nel contenitore pari al volume di una
nocciola, in ogni caso le feci non devono superare 1/3 del volume del
contenitore
Per feci liquide è sufficiente un volume di 2-3 ml
Non contaminare la superficie esterna ed il tappo del contenitore
Inviare al laboratorio di Microbiologia al più presto senza conservazione in
frigorifero
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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FECI per ESAME PARASSITOLOGICO
risposta 1 – 3 giorni
Materiale per la raccolta
Contenitore in plastica sterile, provvisto di eventuale “cucchiaino”.
vetrino portaoggetti / scotch trasparente
Modalità di prelievo
A. Ricerca parassiti intestinali e loro uova:
Raccogliere una piccola quantità di feci nel contenitore pari al volume di una
nocciola
Per feci liquide è sufficiente un volume di 2-3 ml
Non contaminare / imbrattare la superficie esterna ed il tappo del contenitore
in ogni caso la quantità di feci raccolta non deve superare 1/3 del volume del
contenitore
B. Scotch test per ricerca uova di ossiuri :
tagliare una striscia di scotch trasparente della lunghezza del vetrino portaoggetti
al momento del risveglio mattutino (prima di andare in bagno) far aderire per
qualche secondo la striscia adesiva di scotch sulle pliche dell’orifizio anale
apporre la striscia adesiva sul vetrino portaoggetti
avvolgere il vetrino in un foglio di carta, su cui va scritto il nome.
Conservazione
I materiali devono essere inviati nel più breve tempo possibile in Microbiologia.
Note
Per la ricerca di Entamoeba histolytica è necessario eseguire l’esame su feci appena
emesse
Sono generalmente da evitare campioni raccolti la sera precedente.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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RICERCA ANTIGENE HELICOBACTER PYLORI SU FECI
risposta 4-6 giorni
Materiale per la raccolta
Contenitore in plastica sterile, provvisto di eventuale “cucchiaino”.
Modalità di prelievo
Raccogliere una piccola quantità di feci nel contenitore pari al volume di una nocciola
Non contaminare la superficie esterna del contenitore.
Il campione non deve imbrattare le superfici esterne ed il tappo del contenitore
N,B. Il paziente non deve aver assunto antibiotici, inibitori della pompa protonica e
preparazioni a base di bismuto nelle due settimane precedenti l’esame.
Trasporto e Conservazione
Il campione deve pervenire al laboratorio in un contenitore chiuso per il trasporto.
Campioni fecali conservati in terreni di trasporto, tamponi o conservanti sono inadeguati
per il test.
Nota:
Campioni fecali liquidi o diarroici non sono appropriati per l’esecuzione del test
Il test puo’ essere eseguito solo dopo quattro settimane dal termine della terapia
eradicante.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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Pag. 22 di 39
ESPETTORATO
per germi comuni (Referto in 3 – 5 giorni)
per ricerca microscopica di Micobatteri (Referto in 1 – 2 giorni)
per ricerca colturale di Micobatteri (Referto in 60 giorni)
per ricerca molecolare di Micobatteri (test di biologia molecolare)
Materiale per la raccolta
Contenitore sterile in plastica, a tappo bocca larga, con tappo a vite.
Modalità di raccolta
Raccogliere il campione del primo mattino a digiuno, perche è più
rappresentativo delle secrezioni polmonari accumulatesi durante la notte
Eseguire immediatamente prima una adeguato lavaggio con acqua distillata del
cavo orale
Con un colpo profondo di tosse espettorare direttamente nel contenitore sterile,
tenendolo adeso al labbro inferiore
chiudere bene il contenitore, riavvitando il tappo
Se il paziente ha difficoltà ad espettorare ricorrere alla induzione aerosolica:
far inspirare al paziente lentamente e profondamente un aerosol di soluzione
salina tiepida per una decina di volte
far espettorare successivamente nel contenitore come prima
Conservazione:
per germi comuni: inviare subito al laboratorio di Microbiologia, non oltre
due ore dal prelievo
per la ricerca di Micobatteri (diretta e colturale) conservare fino a 24 ore in
frigorifero.
per la sola ricerca di Micobatteri in biologia molecolare conservare a –
20°C
N.B. per la ricerca in Biologia Molecolare inviare un campione dedicato
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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BRONCOASPIRATO
per germi comuni (Referto in 3 – 5 giorni)
per ricerca microscopica di Micobatteri per ricerca colturale di
Micobatteri (Referto in 60 giorni)
per ricerca molecolare di Micobatteri (test di biologia molecolare)
Materiale per la raccolta
Set sterile monouso per aspirazione
Modalità di raccolta
Aspirare le secrezioni tracheo-bronchiali / BAL con tecnica «no-touch»,
indossando guanti e mascherina
Utilizzare una cannula sterile monouso per singola aspirazione, collegata al
sistema di aspirazione e ad apposito contenitore con tappo a vite
In caso di scarsa secrezione, immettere 3-5 ml di SF sterile con il sondino allo
scopo di rimuovere più facilmente le secrezioni profonde, aspirare
Conservazione
Inviare subito al laboratorio di microbiologia o conservare non oltre le due ore
dal prelievo.
Se l’espettorato è solo per la ricerca di Micobatteri in BIOLOGIA MOLECOLARE
deve essere conservato a – 20°C
Note
Materiale non idoneo per la ricerca di batteri anaerobi; l’eventuale ricerca di
micobatteri e miceti deve essere indicata sul modulo di richiesta.
In caso di infezioni a sospetta etiologia da anaerobi è necessario ricorrere ad una delle
seguenti procedure:
aspirazione transtracheale
aspirazione con broncoscopio con procedura protetta
lavaggio bronchiolo-alveolare protetto
E’ utile seguire constestualmente un prelievo per emocoltura, che può risultare positiva
nel 30-40% delle polmoniti.
Per la ricerca diretta dei Micobatteri in biologia molecolare inviare un campione
dedicato a questo tipo di esame (nel caso di ricerca diretta in biologia molecolare e
ricerca colturale occorre inviare due campioni)
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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LAVAGGIO BRONCO-ALVEOLARE (BAL)
per germi comuni (Referto in 3 – 5 giorni)
per ricerca microscopica di Micobatteri (Referto in 1 – 2 giorni)
per ricerca colturale di Micobatteri (Referto in 60 giorni)
per ricerca molecolare di Micobatteri (test di biologia molecolare)
Materiale per la raccolta
Set sterile monouso per aspirazione
Modalità di raccolta
Aspirare il BAL con tecnica «no-touch» come per il boronco asprirato
Immettere circa 15 ml di soluzione fisiologica sterile con il sondino allo scopo di
aspirare direttamente nel contenitore del set di aspirazione.
Conservazione
Inviare subito al laboratorio di microbiologia o conservare non oltre le due ore dal
prelievo.
Se l’espettorato è solo per la ricerca di Micobatteri in BIOLOGIA MOLECOLARE
deve essere conservato a – 20°C
Note
Materiale non idoneo per la ricerca di batteri anaerobi; l’eventuale ricerca di
micobatteri e miceti deve essere indicata sul modulo di richiesta.
Il campione per la tipizzazione linfocitaria deve pervenire separatamente da quello per
l’esame colturale, riportando sul modulo di accompagnamento quanta soluzione
fisiologica è stata impiegata.
Per la ricerca diretta dei Micobatteri in biologia molecolare inviare un campione
dedicato a questo tipo di esame (nel caso di ricerca diretta in biologia molecolare e
ricerca colturale occorre inviare due campioni in giorni diversi)
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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TB-GOLD - Produzione di IFN- : risposta cellulo-mediata
agli antigeni specifici del M. tuberculosis
PRELIEVI DAL LUNEDI’ AL VENERDI’
(NON SI ESEGUONO NEI GIORNI PREFESTIVI)
Materiale per la raccolta
PROVETTE: TAPPO GRIGIO, TAPPO ROSSO E TAPPO VIOLA FORNITE
dal LABORATORIO DI MICROBIOLOGIA
Modalità di prelievo
Raccolta di 1 ml sangue in ciascuna provetta (riempire fino alla tacca nera):
tappo grigio, tappo rosso e tappo viola
Subito dopo aver eseguito il prelievo invertire le provette delicatamente per
almeno 8-10 volte (l’omissione di tale passaggio invalida il test)
Trasporto e conservazione
Non refrigerare né congelare i campioni di sangue ma conservarli a temperatura
ambiente per non più di 6 ore prima di inviarli al Laboratorio di Microbiologia.
Note:
Le provette devono essere accompagnate da una scheda informativa del paziente
debitamente compilata fornita dal laboratorio di Microbiologia
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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TAMPONE FARINGEO
Risposta colturale 3 – 5 giorni per germi comuni
Materiale per la raccolta
tampone in cotone o dacron con asta in plastica flessibile e terreno di trasporto
Modalità di prelievo
Facendo uso di un abbassalingua sterile e di un appropriato sistema di
illuminazione, eseguire il tampone partendo dalla tonsilla destra, seguire il
pilastro anteriore destro e dopo aver contornato l’arcata dell’ugola, scendere
lungo il pilastro anteriore sinistro finendo con uno striscio sulla tonsilla sinistra e
sulla parete posteriore dell’orofaringe.
Non contaminare il tampone con la saliva, evitando il contatto con la lingua, il
velo palatino e le arcate dentarie.
Conservazione
Conservare a temperatura ambiente, per non più di 4 ore.
Note
1. Di routine viene ricercato S. pyogenes (streptococco beta emolitico di gruppo A)
2. ogni altra ricerca (es. N. meningitidis, S. aureus, C. diphteriae) deve essere
specificata e motivata nel modulo di richiesta.
Prelievi eseguiti nel cavo orale (mucosa orale / linguale / gengivale…) trovano
indicazione solo per la ricerca di miceti.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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Pag. 27 di 39
TAMPONE RINOFARINGEO
Risposta colturale 3 – 6 giorni per germi comuni
Materiale per la raccolta
Tampone sottile con asta flessibile in alluminio
Modalità di prelievo
Dopo aver immobilizzato la testa del paziente, inserire con cautela il tampone sottile in
una narice fino a raggiungere la parete posteriore del rinofaringe; mantenere il
tampone “in situ” per qualche secondo prima di estrarlo.
Conservazione
Conservare a temperatura ambiente per 6 ore.
Note
Trova indicazione solo per ricerche mirate; non trova invece giustificazione la sua
esecuzione per la diagnosi eziologica di sinusiti e/o riniti croniche.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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SECREZIONE AURICOLARE
Risposta colturale 3 – 6 giorni per germi comuni
Materiale per la raccolta
Tampone sottile con asta flessibile in alluminio
Modalità di prelievo
DA ORECCHIO MEDIO (a cura dello specialista)
1. dopo timpanocentesi, raccogliere il secreto con siringa e agocannula in provetta
sterile
DA ORECCHIO ESTERNO (condotto uditivo esterno)
Inserire delicatamente il tampone nel condotto uditivo esterno e ruotarlo
Con un secondo tampone prelevare il materiale come sopra e ruotarlo su un
vetrino per l’esame batterioscopico.
Conservazione
In caso di difficoltà nell’esecuzione del prelievo è utile consultare il medico specialista,
che, utilizzando l’otoscopio, raddrizza la curvatura del condotto uditivo esterno,
riducendo il rischio di contaminazione durante il prelievo.
Il tampone può essere conservato a temperatura ambiente in terreno di trasporto per 6
ore.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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Pag. 29 di 39
PRELIEVI CONGIUNTIVALI
Risposta colturale 3 – 6 giorni per germi comuni
Materiale per la raccolta
Tampone con terreno di trasporto.
Set prelievo per Chlamydia (da richiedere in Microbiologia)
Siringhe monouso o cannule sterili.
Modalità di prelievo
A) Congiuntivite batterica:
1. Con tampone raccogliere la secrezione dalla congiuntiva tarsale, prima dell’
instillazione di antibiotici
B) Ricerca Chlamydia trachomatis :
2. con il tampone sottile, presente nel set di prelievo fornito, eseguire delicatamente
una scarificazione sull’eventuale sede di lesione
3. inserire il tampone nell’apposita provetta e con una leggera pressione rompere
l’asta nella provetta e richiuderla con il tappo.
C) Ricerca Chlamydia trachomatis in su cornea (a cura dello specialista):
con il tampone sottile, presente nel set di prelievo fornito, eseguire delicatamente
una scarificazione sull’eventuale sede di lesione
vedi punto 3.
D) In caso di endolftalmite, celluliti orbitali e celluliti perisettali:
L’umor acqueo, vitreo o il pus devono essere raccolti mediante l’impiego di
siringhe monouso sterili. Il materiale così raccolto consente di eseguire colture
anche per anaerobi.
Il prelievo deve essere eseguito dall’oculista
Conservazione
Tutti i materiali così raccolti, tamponi compresi, devono essere immediatamente
consegnati in Microbiologia.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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Pag. 30 di 39
TAMPONI URETRALI
Risposta colturale 3 – 5 giorni per germi comuni
Materiale per la raccolta
Tampone sottile per prelievi uretrali.
vetrini porta oggetto
provetta di plastica sterile con un ml di soluzione fisiologica
Modalità di prelievo
Accurata pulizia dei genitali esterni.
Raccolta del materiale da esaminare, evitando accuratamente ogni contaminazione.
1. Inserire il tampone sottile per 2 cm nel meato uretrale, meglio a paziente supino.
2. Prelevare la secrezione con il tampone per ogni patogeno richiesto ( germi
comuni, Micoplasmi urogenitali, Neisseria gonorroeae ….)
3. Allestire due vetrini per colorazioni ruotando il tampone sul vetrino (non
strisciare per non alterare la morfologia delle cellule).
Per la ricerca di Trichomonas
Allestire una sospensione di secrezione in un ml di soluzione fisiologica
In alternativa raccogliere in una provetta da 10 ml il 1° getto di urina, dopo almeno due
ore dall’ultima minzione.
Note
E’ bene effettuare il tampone uretrale dopo almeno due ore dall’ultima minzione.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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ESSUDATO CERVICO - VAGINALE
Risposta colturale 3 – 5 giorni per germi comuni
Materiale per la raccolta
tampone doppio in cotone o dacron con asta di plastica flessibile e terreno di trasporto
tamponi a secco
vetrini porta oggetto
provetta di plastica sterile con un ml di soluzione fisiologica
speculum sterile
Modalità di prelievo:
paziente in posizione ginecologica, inserire, se occorre, lo speculum ed effettuare il
prelievo nel fornice vaginale posteriore
A) ricerca germi comuni, gardnerella, miceti…
 con un tampone a secco allestire uno striscio per colorazione di gram
 con un secondo tampone a secco prelevare la secrezione e stemperare nella
provetta con soluzione fisiologica sterile
 raccogliere la secrezione con il tampone e richiudere il tampone nell’astuccio
contenente il terreno di trasporto
B) ricerca microscopica per Trichomonas
 con un tampone a secco prelevare la secrezione e stemperare nella provetta con
soluzione fisiologica sterile.
C) ricerca Streptococco agalactiae
 prelevare con il tampone la secrezione
 richiudere il tampone nell’astuccio contenente il terreno di trasporto
D) ricerca Micoplasma
 prelevare con il tampone la secrezione dalla cervice uterina
 richiudere il tampone nell’astuccio contenente il terreno di trasporto
E) ricerca Neisseria gonorroeae
 prelevare con il tampone la secrezione dalla cervice uterina
 richiudere il tampone nell’astuccio contenente il terreno di trasporto
 con un tampone a secco allestire due strisci per colorazioni
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
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Conservazione
Inviare subito al Laboratorio di Microbiologia.
Note
La paziente deve evitare, dalla sera precedente l’esame, il bagno in vasca e
l’introduzione in vagina di prodotti per l’igiene intima; possono, invece, essere
effettuati i lavaggi esterni.
L’applicazione di farmaci locali deve essere stata sospesa da almeno una settimana.
Eseguire il prelievo preferibilmente non nel periodo mestruale, per evitare risultati
falsamente negativi.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
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Pag. 33 di 39
TAMPONI ENDOCERVICALI ed URETRALI per RICERCA
CHLAMYDIA TRACHOMATIS
risposta 7 – 10 giorni
Materiale per la raccolta
Set di prelievo dedicato da richiedere in Microbiologia
Modalità di prelievo
A. Dal canale endocervicale:
1. Paziente in posizione ginecologica, introdurre lo speculum
2. Rimuovere l’eccesso di muco dall’orifizio cervicale con uno dei due tamponi forniti
nel kit e gettare il tampone
3. Introdurre il secondo tampone grande nel canale endocervicale e ruotarlo per 3-5
secondi.
4. Inserire il tampone nella provetta di trasporto, agitare il tampone nel liquido per 15
secondi quindi premerlo contro la parete della provetta. Estrarre il tampone con
l’eventuale muco residuo, quindi gettare il tampone e chiudere la provetta
ermeticamente.
Dall’uretra:
1. Inserire il tampone sottile fornito nel kit per 2 cm nel meato uretrale, meglio a
paziente supino.
2. Inserire il tampone nella provetta di trasporto, agitare il tampone nel liquido per 15
secondi quindi premerlo contro la parete della provetta. Estrarre il tampone quindi
gettare il tampone e chiudere la provetta ermeticamente.
3. In assenza di secrezione spontanea o se risulta impossibile effettuare tale prelievo,
l’esame puo’ essere praticato su urina.
Trasporto e Conservazione
I campioni possono essere trasportati a temperatura ambiente e devono pervenire in
laboratorio entro 24h.
I tamponi sono stabili per 10 giorni a temperatura ambiente.
Note
La ricerca della Chlamydia su Tampone vaginale si puo’ eseguire nelle donne in avanzato
stato di gravidanza che rifiutano il prelievo endocervicale e negli uomini, su urina, in
sostituzione del tampone uretrale
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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Pag. 34 di 39
RICERCA CHLAMYDIA TRACHOMATIS SU URINE
risposte 7 –10 giorni
Materiale per la raccolta
Provetta falcone sterile da 50 ml con tappo a vite
Modalità di prelievo
1. accertarsi che il paziente non abbia urinato da almeno 2 ore
2. avvisare il paziente di raccogliere i primi 15-20 ml di urina (il primo getto)
3. raccogliere il campione di urina nel contenitore di plastica con tappo a vite
Trasporto e Conservazione
I campioni di urine sono stabili per 24 ore a temperatura ambiente; possono essere
conservati ad una temperatura di 2-8°C se il test viene eseguito entro 4 giorni dalla
raccolta, altrimenti possono essere conservati a –20°C ed analizzati entro 60 giorni.
Note
La ricerca della chlamydia su urine si puo’ eseguire negli uomini in sostituzione del
tampone uretrale
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
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Pag. 35 di 39
TAMPONI ENDOCERVICALI PER RICERCA PAPILLOMAVIRUS
risposte 15 giorni
Materiale per la raccolta
Set contenitore STRATO SOTTILE (Surepath contenitore tappo blu) per
Pap-test e HPV PCR (lo strato sottile può essere un unico per entrambe le
richieste).
Set contenitore provetta Digene
(per il materiale rivolgersi al laboratorio di Microbiologia)
Modalità di prelievo
Per il prelievo eso-endocervicale utilizzare SOLO lo STRATO SOTTILE; se
il prelievo riguarda l’ uretra , zona esterna vaginale , la zona esterna vulvare ed
i genitali maschili, si ritiene più idoneo l’utilizzo della provetta Digene.
In tal casi dovrà essere inserito un nuovo block-test 959.
Con la paziente in posizione ginecologica, introdurre lo speculum
Rimuovere l’eccesso di muco dall’orifizio cervicale con tamponi a secco
Inserire l’apposito “spazzolino” nell’endocervice e ruotarlo per alcuni
secondi; nel caso di una lesione visibile strofinare anche in tale sede.
Inserire il tampone nella provetta di trasporto, spezzare il bastoncino e
chiudere ermeticamente
Trasporto e Conservazione
I campioni possono essere trasportati a temperatura ambiente e devono
pervenire in laboratorio entro 4-5 ore.
I prelievi possono essere conservati ad una temperatura di 2-8°C per non più
di 15 giorni, altrimenti possono essere conservati a –20°C ed analizzati entro
60 giorni.
Note
Se il pz ha una richiesta sia per Pap Test che per HPV PCR si esegua un solo
strato sottile oltre ai due vetrini convenzionali. Su tale STRATO SOTTILE
andranno apposte le 2 etichette 920 e 959.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
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Pag. 36 di 39
TAMPONI PER RICERCA HERPES VIRUS
risposte 7 – 10 giorni
Materiale per la raccolta
Set di prelievo dedicato da richiedere in Microbiologia
Modalità di prelievo
A. Dal canale endocervicale vaginale:
Paziente in posizione ginecologica, introdurre lo speculum
- rimuovere l’eccesso di muco dall’orifizio cervicale con tamponi a secco
- eseguire con l’apposito tampone una lieve pressione sull’eventuale lesione
- in assenza di lesioni visibili, inserire il tampone sottile nell’endocervice e ruotarlo
per alcuni secondi
-
- ruotare il tampone sulle due aree circolari del vetrino
- far cadere alcune gocce di fissativo o acetone sul vetrino dopo aver schiacciato
l’ampolla.
B. Da eventuali lesioni su cute o mucose:
Eseguire con l’apposito tampone una lieve pressione sull’eventuale lesione
Ruotare il tampone sulle due aree circolari del vetrino
Far cadere alcune gocce di fissativo o acetone sul vetrino dopo aver schiacciato l’ampolla.
Trasporto e Conservazione
I campioni possono essere trasportati a temperatura ambiente e devono pervenire in
laboratorio entro 24h.
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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Pag. 37 di 39
CUTE – ANNESSI CUTANEI
risposte 10 –15 giorni
Materiale per la raccolta
Tampone con terreno di trasporto
Contenitore sterile a bocca larga con tappo a vite
Bisturi, pinzetta e forbice sterili
Modalità di prelievo
A) UNGHIA:
1. Decontaminare le parti da esaminare con acqua e sapone e sciacquare
abbondantemente
2. Tagliare con le forbici piccoli frammenti di unghia direttamente nel contenitore
,oppure
3. Grattare con il bisturi la superficie interessata raccogliendo i frammenti nel
contenitore indicato.
B) PELI/CAPELLI:
1. Con la pinzetta individuare il pelo/capello
2. Tagliare con le forbici più vicino possibile alla radice e deporre nel contenitore
C) ONICOMICOSI:
Decontaminare le parti da esaminare con acqua e sapone e sciacquare abbondantemente
Prelevare la secrezione con il tampone e richiudere il tampone nell’astuccio contenente
il terreno di trasporto
D) CUTE:
1. Decontaminare le parti da esaminare con acqua e sapone e sciacquare
abbondantemente
2. Con la pinzetta raccogliere le scaglie di cute al margine periferico della lesione
3. Con il bisturi scarificare delicatamente al margine periferico della lesione porre il
materiale direttamente nel contenitore indicato.
Trasporto e Conservazione
I campioni possono essere trasportati a temperatura ambiente e devono pervenire in
laboratorio entro 12h.
NOTE
Di norma, sui materiali siglati A), B) e D) si esegue la ricerca di miceti filamentosi e
sul materiale siglato C) si esegue la ricerca di Candida spp.
Aggiungere sempre nella richiesta il sospetto diagnostico, il sito del prelievo, l’eta’ del
paziente e qualche notizia anamnestica
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MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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Pag. 38 di 39
INDICE
EMOCOLTURA
EMOCOLTURA DA CVC
COLTURA CVC (punta o altro tratto)
SECREZIONE da SITO INSERZIONE CVC
pg1
pg3
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LIQUOR CEFALORACHIDIANO
pg7
LIQUIDI CAVITARI (PLEURICO, PERICARDICO,
ASCITICO,
SINOVIALE …) – RACCOLTE
ASCESSUALI CHIUSE
(U*)
pg8
LIQUIDI E RACCOLTE ASCESSUALI
DA DRENAGGIO
(U*)
pg9
SECREZIONE DI FERITA, FISTOLA
pg10
LESIONI DA PRESSIONE
pg11
PEZZI BIOPTICI, PROTESI
pg12
RICERCA COLTURALE da Biopsia
HELICOBACTER PYLORI
pg13
URINE
pg14
URINE in neonati/lattanti
pg15
URINE DA CATETERE a circuito chiuso
pg16
Azienda USL RMB – U.O.C. DI MICROBIOLOGIA VIROLOGIA
MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
Ricerca antigene urinario di Legionella e Pneumococco
COPROCOLTURA
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MOD-RPCC
REV.2 –05.11.02
AGGIORNATO al
10/03/2010
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pg
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FECI per ricerca Rotavirus / Adenovirus e
Tossina A di Clostridium difficile
pg
ESAME PARASSITOLOGICO FECI
pg20
RICERCA ANTIGENE HELICOBACTER
PYLORI SU FECI
pg21
ESPETTORATO coltura germi comuni e BK
pg22
BRONCOASPIRATO coltura germi comuni e BK
pg23
LAVAGGIO BRONCO-ALVEOLARE (BAL)
(esami colturali e citofluorimetrici)
pg24
TB-Gold / Dosaggio INTERFERON PER BK
pg25
TAMPONE FARINGEO
pg26
TAMPONE RINOFARINGEO
pg27
SECREZIONE AURICOLARE
pg28
PRELIEVI OCULARI
pg29
TAMPONI URETRALI
pg30
ESSUDATO CERVICO – VAGINALE
pg31
Azienda USL RMB – U.O.C. DI MICROBIOLOGIA VIROLOGIA
MODALITA’ RACCOLTA, PRELIEVO E
CONSERVAZIONE CAMPIONI
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MOD-RPCC
REV.2 –05.11.02
AGGIORNATO al
10/03/2010
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TAMPONI ENDOCERVICALI ED URETRALI
PER RICERCA CHLAMYDIA TRACHOMATIS
pg33
RICERCA CHLAMYDIA TRACHOMATIS
SU URINE
pg34
TAMPONI ENDOCERVICALI PER RICERCA
PAPILLOMA VIRUS
pg35
TAMPONI ENDOCERVICALI PER RICERCA
HERPES VIRUS
pg36
CUTE – ANNESSI CUTANEI
pg37