workshop ERSAF, 28 maggio, 2008 I microrganismi nella digestione anaerobica: casi di studio Dr.ssa Aurora Rizzi Dipartimento di Scienze e Tecnologie Alimentari e Microbiologiche (DISTAM), Università di Milano Olive Mill Wastewater Southern Europe Countries world major producers of olive oil and hence major producers of OMW OMW characteristsics Very high COD (up to 200 g l-1) High content of polyphenols (up to 6 g l-1) Relatively low pH (4-5) OMW anaerobic digestion CH4 production Spontaneous separation of CH4 Low sludge production [Bertin et al. 2004 FEMS Microbiol. Ecol. 48:413-423] Polyphenols can strongly decrease the process efficiency being toxic for methanogenic Archaea, a key component of the reactor microflora [Field & Lettinga 1987 Water Res. 21:367-371] How methanogen community respond to increasing OMW organic loads? Anaerobic Digester for OMW Treatment Anaerobic digester (11 L) Up-flow fixed bed digester (7.5 L) Contact reactor (3.5 L) Packing with wood chips HRT = 48 h Temperature = 37 °C Vol. Org. Load = 1-15 g COD l-1d-1 Biogas GC Gas Counter Contact reactor Fixed bed filter OMW Influent OMW Effluent OMW-Influent Diluted OMW Influent pH = 6.1-6.4 N correction with NH4Cl Influent COD = 5.9-31 g l-1 Process Performances 25 COD removal 100 20 80 15 60 VOL 40 10 CH4 20 5 97 10 5 11 3 12 1 12 9 13 7 14 5 15 3 16 1 16 9 89 81 73 65 49 41 33 25 17 0 9 1 0 57 % di abbattimento del COD Removal (%) COD 120 Time (d) Te m po (d) Abbattimento del COD Carico organico Produzione di metano g COD/ll-1 d d-1) COD (gorganico VOLCarico Produzione di metano COD rem) CH4 (l/10g l CH4/10g COD rimosso TABLE 1. Process parameters of OMW anaerobic digestion at different VOL. For each process phase average values and SD of the parameters were calculated for a number of samples n reported in brackets. Parameter VOL (g COD l-1react d-1) 2.70.47 (28) 5.70.5 (13) 6.60.9 (10) 10.12.4 (11) 15.23.7 (8) Treatment time (d) 70 28 22 18 34 HRT (d) 2.20.3 (61) 20.1 (26) 20.1 (20) 2.20.3 (18) 20.1 (23) Influent pH 6.170.12 (50) 6.380.09 (23) 6.40.07 (19) 6.420.14 (16) 6.40.1 (23) Effluent pH 7.770.21 (43) 7.820.3 (17) 7.80.28 (18) 7.980.35 (14) 7.760.26 (24) Infl. COD (g l-1) 5.90.8 (30) 11.90.8 (13) 13.21.3 (10) 21.82.7 (11) 31.37.8 (8) -1 Effl. Sol. COD(g l ) 0.960.3 (23) 1.40.4 (11) 1.40.4 (7) 1.610.48 (8) 2.9248 (6) Sol COD removal (%) 84.15.1 (23) 88.53.6 (11) 88.73.9 (7) 92.41.6 (8) 89.21.9 (6) -1 Spec. CH4 prod. (l g CODrem) 0.330.08 (22) 0.260.06 (11) 0.270.04 (7) 0.230.06 (8) 0.160.04 (6) CH4 in the biogas (%) 74.22.5 (29) 71.91.6 (15) 71.61.4 (11) 69.61.8 (13) 69.53.4 (17) Process Performances Carico organico, C2 e AGVLtot 25 1600 20 1400 1200 15 1000 VFA 800 600 10 VOL 400 5 C2 200 - VFA: below 800 mg l-1 - Acetic acid (C2): 7080% of VFA C2 AGVLtot Carico organico Low VFA and C2 indicate efficient acetogenic and methanogenic phases 175 169 163 157 151 145 139 133 127 121 Tempo (d) (d) Time 115 109 97 103 91 85 79 73 67 61 55 49 43 37 31 25 19 7 13 0 1 0 Carico organico ( g COD/l d) 1800 VOL (g COD l-1d-1) -1 VFA and C2 AGVL mg/l (mg l ) 2000 - At VOL 10 g COD l-1d-1 the effluent COD is 1.6 g l-1 - Since 1g C2 gives 1g COD, more than 50% of effluent COD was due to VFA - Hence low residual polyphenols A decrease of specific CH4 production at VOL of 10 g COD l-1d-1 !! acetone (50 ml) sample (25 ml) discarded flocculated solids centrifugation concentration under N2 stream n-hexane (50ml) (extraction repeated 4 times) water solution acetone eliminated discarded lipid fraction freeze drying H2O (1ml) CH3CN (10 ml) n-hexane (20 ml) (extraction repeated 6 times) sonication n-hexane discarded lipid fraction polyphenolic extract in CH3CN concentration under N2 flux, 30 C MeOH (3ml) CH3CN eliminated methanolic polyphenolic extract Fig. 1. Scheme of the procedure used for the extraction of polyphenols from olive mill waste waters and from the plant effluents. The average recovery of polyphenols on the basis of addition of known concentrations of gallic acid was 59%. The average percent removal of polyphenols in the ractor was 89.5% [100% for 2-(p-hydroxy)phenilethanol]. Removal of 2-(p-hydroxy)phenilethanol was calculated on the basis of the response factor of the corresponding standard while the content of the remain polyphenols was calculated using the responce factor of caffeic acid. Methanogenic Archaeal Community H2 Acetate 10 Log MPN/SSV g-1 VSS) (Log MPN Methanogen counts 12 No apparent changes in the methanogen assemblage in the effluent as shown by MPN counts and coenzyme F420 8 6 4 2 0 2.7 5.7 6.6 10.1 15.2 2.7 5.7 6.6 10.1 15.2 29/05/96 23/01/96 25/07/96 26/03/96 26/03/96 29/05/96 25/07/96 VOL (g COD l-1d-1) COD/l dd; 29/5/96=5g COD/l d; 9/7/96=>15g COD/l d D/l d; 26/3/96=2,5g COD/l d; 29/5/96=5g COD/l d; 26/3/96=2,5g 9/7/96=>15g COD/l 23/1/96=0,5g H2-trofi Acetog. SO4-rid. Acetoclasti Gluc.Ferm. H2-trofi SO4-rid. Gluc.Ferm. 2 0 3 0 1 5 2 5 2 0 1 0 VOL 1 5 5 1 0 161 0 151 141 121 io r n i) Time( g(d) T E M P O 111 101 91 81 71 61 51 41 21 11 0 131 F420 5 1 (nmoles g-1 VSS) F420 Coenzyme 3 5 31 Acetoclasti 2 5 VOL (g COD l-1d-1) 4 0 -5 Analysis of Methanogenic Archaeal Community Analysis by SSCP (Single Strand Conformation Polymorphism) can resolve the diversity of bacteria and Archaea by separation of single strand fragments with different conformations Preparazione delle singole eliche A- con la temperatura single strands A B C B- con primer fosforilati e digestione con l-esonucleasi C- con primer biotinilati e cattura magnetica l exon. biotin Methanogenic Archaeal Community: Diversity P Methanogen-specific primer 798 915 5’ end phosphorilated primer Archaea-universal primer SSCP analysis of 16S rRNA gene - PCR with a P-labelled primer - l-nuclease digestion of the P-labelled strand - PCR on a collection of 30 methanogen species - PCR on biofilm collected at 5.7 and 10 g COD l-1d-1 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 No apparent qualitative differences in the Archaea community pattern. The methanogen community was apparently dominated by M.bacterium H2 consuming M.sarcina/M.saeta Acetate consuming Methanogenic Archaeal Community: Abundance Quantification of the different phylogenetic groups of methanogens based on extinction of PCR signals amplified from biofilm sludge DNA [Wang et al., 1996 Appl. Environ. Microbiol. 62:1242-1247] PCR sensitivity (the minimal n° of cells giving amplification) PCR sensitivity PCR titer (The maximum sludge DNA dilutions for positive PCR) PCR Titer +++- - Microscopic cell counts PCR Sample Culture DNA extr. DNA extr. Culture dilutions +++- PCR Sample dilutions Methanogenic Archaeal Community: Abundance Specific PCR for the different phylogenetic groups of methanogens were set up basing on 16S rRNA gene signatures [Raskin et al., 1994 Appl. Environ. Microbiol. 60:1232-1240] 5’ end bitinilated probe B Methanogen-specific primer Fwd Species (strains) 300 798 915 800 Archaea-universal primer 1100 1200 Magnetic Capture hybridization Specific PCR Primer sets PCR sensitivity Mb Mc Mm Ms1 Ms2 Mb. formicicum 1535, 3637, 3636, 2639, 3722, 6299; Mb. ulginosum + 104 2956; Mb. ivanovii 2611; Mb. bryantii 863; Mb. palustre 3108; Mb. thermoalcaliphilum 3267; Mb. thermoautotrophicum 1053, 3720; Mb. thermoaggregans 3266; Mb. wolfei 2970; Mb. thermophilum 6529; Mbrev. arboriphilicus 1125; Msph. stadtmanae 3091 Mc. maripaludis 2067; Mc. voltae 1537; Mc. vannieli 1224 + 103 Mg. cariaci 1497; Mcull. marisnigri 1498; Mspirillum hungatei 864; + 102 Mcorp. parvum 3823; Mcorp. sinense 4274; Mp. limicola 2279 Msar. barkeri 800; Msar. mazei 2053; Msar. vacuolata 1232; Msar. + 102 acetivorans 2834 Mtrix thermophila 6194; Msaeta concilii 3671 + + 104 Methanogenic Archaeal Community: Abundance PCR TITER IN THE BIOFILM VOL = 5.7 VOL = 10.1 -1 -1 (5.7 g COD l d ) (g COD l-1d-1) H2 consuming 1011 104 n.d. 108 106 n.d. M.sarcina/M.saeta 108 109 12 (Log MPN g-1 VSS) Methanogen counts Acetate consuming M.bacteriaceae M.microbiaceae M.coccaceae 10 8 6 4 2 0 Following VOL increase methanogen community responded by changing the relative abundance of different phylogenetic/physiological groups Conclusions In the adopted reactor OMW were efficiently treated (COD removal around 90%) up to VOL of 15 g COD l-1 d-1 A decrease of CH4 specific production occurred at VOL of 10 g COD l-1 d-1 The overall diversity of methanogen was not affected as shown by SSCP and sequencing Methanogen community reacted by re-balancing the H2trophic/acetotrophic methanogen ratio TRATTAMENTO DEGLI EFFLUENTI DI CANTINA VINICOLA Gli scarti delle cantine vinicole sono costituiti dalle acque di lavaggio degli impianti di vinificazione e contengono parti dei raspi e le bucce degli acini I reflui di cantina contengono concentrazioni residue di zuccheri e acido tartarico (dall’uva), etanolo, acido acetico e acido lattico (residui delle fermentazioni) I reflui che derivano dalla vinificazione del vino rosso contengono anche considerevoli quantità di composti fenolici (antociani e tannini) che possono avere effetto tossico sui microrganismi coinvolti nella degradazione anaerobica, in particolare i metanogeni. Trattamento dei reflui di cantina: • trattamento aerobico elevato consumo di energia richiesto dall’aerazione, e necessità di aggiungere nutrienti • digestione anaerobica abbattimento del carico organico, con recupero di energia (produzione di metano) TRATTAMENTO DEGLI EFFLUENTI DI CANTINA VINICOLA Un processo di digestione anaerobica degli effluenti di cantina vinicola è stato messo a punto in un impianto in scala di laboratorio IMPIANTO: digestore cilindrico, h= 130 cm, riempito con materiale inerte di riempimento (truciolato di legno) come matrice di supporto. Caricamento in fase ascendente. Il digestore conteneva una microflora selezionata nei trattamenti dei precedenti anni (depurazione degli effluenti di pirolisi, dell’acqua di vegetazione delle olive, degli impasti di cartiera) TRATTAMENTO: le acque di cantina erano diluite fino ad avere un carico organico di COD=7-7,5 g/l, ed addizionate di NaHCO3 e NH4Cl. Dopo un periodo di adattamento, il reattore ha raggiunto una fase di equilibrio “steady state” con una rimozione del COD del 90%. Il carico organico è stato quindi aumentato a 10,5-12,5 gCOD/ld, diminuendo il tempo di ritenzione a 16-17h TRATTAMENTO DEGLI EFFLUENTI DI CANTINA VINICOLA La digestione anaerobica delle acque provenienti dalla vinificazione in rosso è risultata meno efficiente rispetto a quella in bianco: • minore rimozione di COD • inferiore produzione di metano • maggior contenuto di AGV nell’effluente (segnale di un’inibizione dei processi di acetogenesi e metanogenesi) • le cariche dei metanogeni presenti nella fase circolante sono inferiori, mentre i batteri eterotrofi e glucosio-fermentanti sono superiori TRATTAMENTO DEGLI EFFLUENTI DI CANTINA VINICOLA Il reattore è in grado di recuperare rapidamente (circa 10 giorni) shocks da carico organico pari ad un aumento improvviso di tre volte del carico organico specifico volumetrico METANOGENESI A BASSA TEMPERATURA Start-up and operation of an anaerobic high-rate staged expanded granular sludge bed (EGSB) system for the treatment of cold (3 to 8°C), dilute wastewater (0.5 to 0.9 g of COD liter-1), containing 12 mg of O2 liter-1 METANOGENESI A BASSA TEMPERATURA POTENZIALITA’ DELLA PRODUZIONE DI METANO - Trattamento termofilo reflui acidificati - Reattori UASB multipli - Carico organico fino a 100 kg COD m-3 day-1 POTENZIALITA’ DELLA PRODUZIONE DI METANO - Rimozione del COD > 90% - Tempo di ritenzione idraulico = 2-2.5 h - Produzione di biogas 40-50 m3 m-3reattore day-1 Grazie per l’attenzione !